Ключевые слова
агробиотехнологии, генная инженерия растений, редактирование растений, биобезопасность биотехнологических растений, биологические и химические средства защиты растений и элиситоры, стрессоустойчивость, абиотический и биотический стрессы, моделирование биологических процессов, биоинформатика, клональное микроразмножение растений, нелистовой фотосинтез, РАМ-флуориметрия

Направления исследований

• разработка новых технологий управления с/х культурами для повышения урожайности
• разработка способов повышения устойчивости растений к фитопатогенам, биотическим, абиотическим стрессовым факторам и изменениям природной среды
• развитие способов клонального микроразмножения растений как основы обеспечения современным посадочным материалом
• изучение фотосинтетических процессов
• интерпретация и обработка экспериментальных данных онтогенеза растений методами машинного обучения
• изучение наследования и проявления перенесенных генов в поколениях биотехнологических растений
• исследования онтогенеза модельных и сельскохозяйственных растений в условиях искусственного климата
• исследование экологической безопасности биотехнологических растений

Основные методы исследований

• молекулярно-биологические: выделение ДНК, РНК, спектрофотометрия, обратная транскрипция, ПЦР, ПЦР в реальном времени, электрофорез, рестрикция, лигирование, трансформация
• микробиологические методы исследований, работа с фитопатогенами
• физиологический, фенотипический и морфологический анализ культур защищенного грунта
• клеточная инженерия растений: микроклональное размножение, агробактериальная трансформация, транзиентная траснформация, электропорация, биобаллистика, получение протопластов
• биоинформатические: обработка и анализ данных секвенирования, работа с базами данных

Краткая история группы

Группа биоинженерии растений (трансформации растений, рук. А.М. Камионская) с 2004 г входила в состав лаборатории генетической инженерии (рук. К.Г. Скрябин). В 2011 году группа переименована в группу молекулярной фитопатологии. С 2013 года объединена с группой искусственного климата. В 2016 г группа переименована в группу биоинженерии растений в составе лаборатории системной биологии растений. С 2020 года выделена в качестве самостоятельного научного подразделения.

Фотографии группы биоинженерии растений (фотограф Евгения Брайд)

ОСНОВНЫЕ ДОСТИЖЕНИЯ

Сотрудниками подразделения защищены 9 кандидатских диссертаций.

В группе выполнены и проводятся работы по грантам Российского научного фонда, Российского фонда фундаментальных исследований, субсидиям и госконтрактам Минобрнауки России.

Основные достижения:

Обнаружены новые данные молекулярного механизма устойчивости к стрессу у томатов при применении биомодулятора (в данном исследовании – хитозана) в зависимости от его концентрации и периода воздействия. Удалось экспериментально продемонстрировать один из этапов индукции механизма стрессоустойчивости у томата, сопряженный с синтезом нескольких фитогормонов, отвечающих за рост корней — ауксина, абсцизовой кислоты и этилена. Новые данные являются предпосылкой для эффективного управления сельскохозяйственными культурами, в частности, растениями томата.

Проведен анализ спектральных характеристик света, при которых происходят световые реакции внутри семени. Впервые показано, что зеленый свет может компенсировать низкое количество синего и красного света, проходящего сквозь покровные ткани плодов и, тем самым, повышать количество световой энергии, используемой зародышами для фотохимических реакций. На основе полученных данных оптимизированы условия освещения при выращивании растений гороха, при которых семена характеризуются более высокими посевными и пищевыми качествами.

Впервые в России для модельного злакового растения Oryza sativа проведён анализ 126 предсказанных потенциальных промоторов 1-й хромосомы генома риса, в результате которого выявлено 34 ранее не аннотированных (в аннотации Enseble) транскриптов, располагающихся за предсказанными промоторами. Также выявлено 16 предсказанных последовательностей, расположенных в открытой области хроматина, доступной для посадки факторов транскрипции. При последующем изучении других аннотаций генома риса: NCBI RefSeq, NCBI GenBank, MSU, обнаружено, что из 126 промоторов найдено 36 последовательностей, имеющих возможное отношение к аннотированным транскриптам. 28 из 36 промоторов оказались реальными, из 28 — 15 согласовались с результатами, полученными при поиске не аннотированной транскрипции. Таким образом полученные данные подтверждают эффективность предсказания промоторных последовательностей с помощью метода MADHS, а также результаты, полученные при поиске не аннотированной транскрипции.

Проанализированы несколько солюбилизирующих фосфор микроорганизмов рода Bacillus и их консорциумы на способность к солюбилизации соединений фосфора. Наибольшее влияние на развитие корневой системы и накопление биомассы растений (сухой массы) наблюдалось для апатитового концентрата стандартного измельчения в сочетании со штаммами Bacillus megaterium BI14 и Bacillus subtilis BI2 и Bacillus velezensis BS89. Полученные результаты свидетельствуют о том, что биологизированные апатитовые концентраты в сочетании с фосор-солюбилизирующими микроорганизмами являются перспективными удобрениями, способными служить источником растворимого P, легко усваиваемого растениями.

Исследовано влияние нокаута PDS в геноме Nicotiana tabacum L. с использованием системы CRISPR-Cas9 на активность нижестоящих генов пути биосинтеза каротиноидов. Получены девять трансгенных линий табака с мозаичным редактированием гена NtPDS – три варианта инделей в области экзона II, приводящих к синтезу укороченной, нефункциональной версии белка.

Проведён подбор параметров работы с генной пушкой «PDS-1000/He Hepta System» для возможности дальнейшей разработки протоколов биобаллистической трансформации растительных клеток, включая применение для редактирования генома сельскохозяйственных растений.

Проведено комплексное исследование и анализ современной научно-технической, нормативной, методической литературы по системам оценки угроз экологического характера, связанных с выпуском биотех растений в открытые системы, с учетом основных тенденций развития этой области.

Осуществлен анализ и экспертиза систем правового регулирования генно-инженерной деятельности в России, странах Таможенного союза, БРИКС, ЕС, США, включая информацию по трансформации систем регулирования, касающихся технологии геномного редактирования растений и животных. Разработаны предложения по совершенствованию российского регулирования ГИД, по корректировке ее понятийного аппарата. Рассмотрены социально-экономические вопросы коммерциализации продукции генетических технологий.

Впервые в России совместно с сотрудниками ВННИИВиВ «Магарач» проведены обследования 15 виноградников Крыма 6 районов возделывания. Впервые в России с помощью ОТ-ПЦР определено наличие вирусов: GRSPaV, GVA, а также бактерий Pseudomonas и Agrobacterium. В результате молекулярной диагностики экономически важных вирусов винограда детектированы GLRaV-1 и -3, GFkV, GFLV. Созданы базы данных распространения обнаруженных вирусов и бактерий в Крыму. Создана коллекция фитопатогенных вирусов и бактерий, обнаруженных на территории Крыма. Разработаны тест-системы для диагностики обнаруженных патогенов винограда.

В результате проведения фитосанитарных обследований коллекционных, производственных виноградников Краснодарского края обнаружены вирусы GLRaV-1, GLRaV-2, GLRaV-3, GVA, GFLV, GFkV, GRSPaV. Совместно с сотрудниками СКФНЦСВВ определена причина усыхания генеративных органов винограда – Fusarium proliferatum, выполнен мультилокусный анализ генов обнаруженного патогена.

Впервые на территории Краснодарского края на винограде с помощью метода вложенной ПЦР обнаружена фитоплазма Candidatus Phytoplasma solani, группа 16SrXII.

Обнаружены специализированные фитопатогенные бактерии P. patens. Изучены симптомы патогенеза на фенотипическом, цитологическом уровне.

Определена антимикробная активность шести эндогенных пептидов мха P. patens в отношении грамположительных бактерий Bacillus subtilis SHgw и Clavibacter michiganensis pv. michiganensis, а также грамотрицательных бактерий Escherichia coli K12 и Xanthomonas arboricola 3004. Показано, что три из шести пептидов ингибируют рост фитопатогенных бактерий X. arboricola 3004 и C. m. pv. michiganensis. Четыре пептида из шести ингибируют рост грамотрицательной бактерии E. coli K12. Также один из шести пептидов показал ингибирующую активность по отношению к грамположительной бактерии B. subtilis SHgw. Обнаружено, что пептиды ингибирующие рост бактерий, в основном являются фрагментами рибосомальных белков.  Данная работа подтверждает потенциал биологической активности пептидов – продуктов деградации функциональных белков.

Изучено влияние различных концентраций и сочетаний фитогормонов, в результате чего подобраны условия культивирования линий капусты белокочанной и рапса.

С использованием метода агробактериальной трансформации получены трансгенные фертильные аналоги стерильных родительских форм четырех линий капусты белокочанной Гэс 2, Мег ‑ 2, Дрв 2, Зму 7 гемизиготные по гену bar. Впервые разработана и применена схема селекционного процесса получения гетерозисного гибрида капусты белокочанной с участием трансгенной составляющей. На основании схемы определена точка приложения трансгенной технологии в традиционном селекционном процессе, проведены скрещивания и получено первое семенное поколение Т1

Оптимизированы параметры регенерации in vitro, подобраны условия эффективного селективного отбора трансформированной ткани, получены трансформированные растения Lemna minor и проведен их молекулярный анализ, подтвердивший интеграцию целевого гена в геном ряски и его эффективную экспрессию.

С использованием Agrobacterium tumefaciens линии ЕНА 105, была проведена генетическая трансформация подсолнечника (Helianthus annuus L.) сорта «Скороспелый 87» Была показана стабильность экспрессии данного гена в двух поколениях трансгенных растений.

Проведена оптимизация таких параметров технологии культуры микроспор рапса, влияющих на эффективность эмбриогенеза, как размер бутона, температура и продолжительность теплового шока. Были определены оптимальные параметры теплового шока: 35°С в течение 72 часов. Показано, что размер бутона не имеет значения, поскольку эмбриогенез зависит от стадии развития пыльцы в бутоне, которая, в свою очередь, зависит от условий выращивания исходного материала.

С использованием Agrobacterium mediated были получены 204 первичных трансформанта картофеля сортов Елизавета, Луговской и Невский, содержащих ген cry IIIa, определяющего устойчивость к колорадсткому жуку. По результатам молекулярно-биологических анализов, были отобраны 3 трансгенные линии (2904 кгс/1 ‑ сорт Елизавета плюс, линия 1210 амк – сорт Луговской плюс и линия 0311мбк ‑ сорт Невский плюс), содержащие 1 полную копию гена на геном, с уровнем экспрессии гена более 10 ppm.

3-х летние полевые испытаний по биобезопасности полученных линий в различных агроклиматических зонах РФ (по стандарту UPOV), показали, что ГМ линии в существенной степени сохраняли все признаки исходных сортов картофеля в репродукциях и стабильно воздействовали на колорадского жука.

Установлено, что крахмалистость и содержание крахмала в клубнях ГМ картофеля и клубнях исходного сорта Луговской идентичны. Различий и затруднений в технологическом процессе при получении крахмала из ГМ картофеля и картофеля, выращенного по традиционной технологии, не наблюдалось. Полученные образцы из исследуемых крахмалов картофеля соответствуют стандарту на крахмал картофельный. Крахмал, выделенный из ГМ картофеля, характеризуется более высоким значением температуры плавления, т.е. является более термостабильным, по сравнению с крахмалом, выделенного из контрольного образца картофеля

СОСТАВ ЛАБОРАТОРИИ

УНИКАЛЬНОЕ ОБОРУДОВАНИЕ И КОЛЛЕКЦИИ

1. Varlamov V. P., Yakovleva I. V. Chitosan and its Derivatives in Agrobiotechnology, Medicine and Industry //Applied Biochemistry and Microbiology. – 2024. – Т. 60. – №. 2. – С. 173-174.
2. Timofeeva T.A., Bubnova A.N., Shagdarova B.Ts. et al. Phenylalanine Ammonia-Lyase-Mediated Differential Response of Tomato (Solanum lycopersicum L.) Cultivars with Different Stress Tolerance to Treatment with Low-Molecular-Weight Chitosan. Agronomy. 2024; 14(2): 386. DOI: 10.3390/agronomy14020386.
3. Timofeeva T.A., Chebotar V.K., Demidov D.V. et al. Effects of Apatite Concentrate in Combination with Phosphate-Solubilizing Microorganisms on the Yield of Ryegrass Cultivar Izorskiy. Agronomy. 2023; 13(6): 1568. DOI: 10.3390/agronomy13061568.
4. А. В. Нежданова, М. А. Слугина, А. В. Кулакова [и др.]. Влияние мозаичного нокаутирования гена фитоиндесатуразы NtPDS на биосинтез каротиноидов у Nicotiana tabacum L. Физиология растений. 2023; 70(6): 601-611. DOI: 10.31857/S001533032360033X.
5. Яковлева И.В., Камионская А.М. Использование новых стратегий биоинформатики на этапе проектирования растений с редактированным геномом (обзор). Прикладная биохимия и микробиология. 2023; 59(6): 525-537. DOI: 10.31857/S0555109923060211.
6. Bubnova A.N., Yakovleva I.V., Korotkov E.V., Kamionskaya A.M. In Silico Verification of Predicted Potential Promoter Sequences in the Rice (Oryza sativa) Genome. Plants. 2023; 12(20): 3573. DOI: 10.3390/plants12203573.
7. Vinogradova S., Porotikova E., Navrotskaya E. et al. The First Virome of a Russian Vineyard. Plants. 2023; 12(18): 3292. DOI: 10.3390/plants12183292.
8. Belkina D., Karpova D., Porotikova E. et al. Grapevine Virome of the Don Ampelographic Collection in Russia Has Concealed Five Novel Viruses. Viruses. 2023; 15(12): 2429. DOI: 10.3390/v15122429.
9. Смоликова Г.Н., Степанова Н.В., Камионская А.М., Медведев С.С. Фотохимическая активность формирующихся семядолей гороха (Pisum sativum L.) зависит от светопропускания покровных тканей и спектрального состава света. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2023; 27(8): 980-987. DOI: 10.18699/VJGB-23-113.
10. Yakovleva I.V., Gaidukova S.E., Kamionskaya A.M. Social and ethical component of genetic technologies. Экологическая генетика. 2023; Vol.21: 68-69. DOI: 10.17816/ecogen567811.
11. Давлекамова А.А., Зубрицкий А.В., Тимофеева Т.А. [и др.]. Оптимизация параметров биобаллистической трансформации Nicotiana tabacum. Прикладная биохимия и микробиология. 2023; 59(3): 1-6. DOI: 10.31857/S0555109923030054.
12. V. Yakovleva, A.M. Kamionskaya. State of the art: Russia starts genome-edited plant assessment. Trends in Biotechnology. 2022; 40(6): 635-638. DOI: 10.1016/j.tibtech.2021.12.004.
13. Darya Shvets, Elena Porotikova, Kirill Sandomirsky, Svetlana Vinogradova. Virome of Grapevine Germplasm from the Anapa Ampelographic Collection (Russia). Viruses. 2022; 14(6): 1314. DOI: 10.3390/v14061314.
14. Darya Shvets, Svetlana Vinogradova. Occurrence and Genetic Characterization of Grapevine Pinot Gris Virus in Russia. Plants. 2022; 11(8): 1061. DOI: 10.3390/plants11081061.
15. Anna V. Nezhdanova, Gleb I. Efremov, Maria A. Slugina et al. Effect of a Radical Mutation in Plastidic Starch Phosphorylase PHO1a on Potato Growth and Cold Stress Response. Horticulturae. 2022; 8(8): 730. DOI: 10.3390/horticulturae8080730.
16. Shvets D.A., Sandomirskiy K.A., Porotikova E.V., Vinogradova S.V. Metagenomic Analysis of Ampelographic Collections of Dagestan Revealed the Presence of Two Novel Grapevine Viruses. Viruses. 2022; 14(12): 2623. DOI: 10.3390/v14122623.
17. А.В. Нежданова, А.В. Щенникова. Влияние редактированной пластидной крахмалфосфорилазы PHO1A на развитие и стрессовый ответ растений картофеля. Актуальная биотехнология. 2022; Т.1: 63-65.
18. Timofeeva T.A., Shtan’ko D., Shagdarova B.Ts. et al. The Effect of Chitosan Hydrolysate on Solanum Lycopersicum Plant Growth. KnE Life Sciences. 2022; Vol.: 435-442. DOI: 10.18502/kls.v7i1.10153.
19. И.В. Яковлева, К.Г. Скрябин, А.М. Камионская. Генетические технологии в российском сельском хозяйстве: проблемы регулирования и общественное мнение. Биотехнология. 2021; 37(1): 5-20. DOI: 10.21519/0234-2758-2021-37-1-5-20.
20. T A Timofeeva, A O Zakurin, A V Nezhdanova et al. Low molecular weight chitosan hydrolyzate inhibits the growth of some phytopathogenic Ascomycota fungi. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. 2021; Vol.839: 042027. DOI: 10.1088/1755-1315/839/4/042027.
21. А.В. Нежданова, А.В. Щенникова. Факторы транскрипции семейства MADS растений: связь с признаками доместикации и перспективы для селекции (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2021; 56(5): 823-842. DOI: 10.15389/agrobiology.2021.5.823rus.
22. Eugene V. Korotkov, Anastasiya M. Kamionskya, Maria A. Korotkova. Detection of Highly Divergent Tandem Repeats in the Rice Genome. Genes. 2021; 12(4): 473. DOI: 10.3390/genes12040473.
23. Eugene V. Korotkov, Yulia. M. Suvorova, Anna V. Nezhdanova et al. Mathematical Algorithm for Identification of Eukaryotic Promoter Sequences. Symmetry. 2021; 13(6): 917. DOI: 10.3390/sym13060917.
24. Коротков Е.В., Суворова Юлия М., Камионская А.М. Search for SINE repeats in the rice genome using correlation-based position weight matrices. BMC Bioinformatics. 2021; Т.22: 42. DOI: 10.1186/s12859-021-03977-0.
25. Elena Porotikova, Uliana Terehova, Vitalii Volodin et al. Distribution and Genetic Diversity of Grapevine Viruses in Russia. Plants. 2021; 10(6): 1080. DOI: 10.3390/plants10061080.
26. Emiliya Navrotskaya, Elena Porotikova, Eugeniya Yurchenko et al. High-Throughput Sequencing of Small RNAs for Diagnostics of Grapevine Viruses and Viroids in Russia. Viruses. 2021; 13(12): 2432. DOI: 10.3390/v13122432.
27. Liubov V. Povkhova, Nataliya V. Melnikova, Tatiana A. Rozhmina et al. Genes Associated with the Flax Plant Type (Oil or Fiber) Identified Based on Genome and Transcriptome Sequencing Data. Plants. 2021; 10(12): 2616. DOI: 10.3390/plants10122616.
28. А. В. Нежданова, М. А. Слугина, Е. А. Дьяченко [и др.]. Структурно-функциональный анализ MADS-box гена SlMADS5 томата Solanum lycopersicum L. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021; 25(5): 492-501. DOI: 10.18699/VJ21.056.
29. Коротков Е.В., Яковлева И.В., Камионская А.М. Использование математических методов с целью оценки безопасности сельскохозяйственных культур. Прикладная биохимия и микробиология. 2021; 57(2): 196-205. DOI: 10.31857/S0555109921020069.
30. Korotkov E.V., Камионская А.М., Korotkova M.A. Search for Tandem Repeats in the First Chromosome from the Rice Genome. Lecture Notes in Computer Science. 2020; Vol.12304: 291-295. DOI: 10.1007/978-3-030-57821-3_26.
31. Korotkov E.V., Kamionskaya A.M., Korotkova M.A. Множественное выравнивание промоторных последовательностей из генома человека. Биотехнология. 2020; 36(4): 7-14. DOI: 10.21519/0234-2758-2020-36-4-7-14.
32. Korotkov E.V., Kamionskaya A. M., Suvorova Yu.M. Поиск сильно дивергировавших SINE повторов в геноме риса. Биотехнология. 2020; 36(4): 15-20. DOI: 10.21519/0234-2758-2020-36-4-15-20.
33. G. Yurchenko, N. V. Savchuk, E. V. Porotikova, S. V. Vinogradova. First Report of Grapevine (Vitis sp.) Cluster Blight Caused by Fusarium proliferatum in Russia. Plant Disease. 2020; 104(3): 991-991. DOI: 10.1094/PDIS-05-19-0938-PDN.
34. Porotikova E., Yurchenko E, Vinogradova S. First Report of ‘Candidatus Phytoplasma solani’ Associated with Bois Noir on Grapevine (Vitis vinifera) in Krasnodar Region of Russia. Plant Disease. 2020; 4(1): 277-277. DOI: 10.1094/PDIS-03-19-0508-PDN.
35. Короткова МА, Камионская А.М., Коротков Евгений Вадимович. A mathematical method for the classification of promoter sequences from the A.thaliana genome. Journal of Physics: Conference Series. 2020; Т.1686: 012031. DOI: 10.1088/1742-6596/1686/1/012031.
36. А.О. Закурин, А.В. Щенникова, А.М. Камионская. Светокультура растениеводства защищенного грунта: фотосинтез, фотоморфогенез и перспективы применения светодиодов // Физиология растений. 2020. Т.67. №3. С. 246-258.doi 10.31857/S0015330320030227
37. Щенникова А.В., Камионская А.М., Нежданова А.В., Гаврилова К.С., Филюшин М.А., Кочиева Е.З., Скрябин К.Г. Факторы транскрипции MhyFIL1 и MhyFIL3 (Monotropa hypopitys) определяют асимметричное развитие боковых органов надземной части растения. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2019. 23(4), 405-411.
38. Yakovleva I.V., Zhuravleva E.V., Kamionskaya A.M. Genetic technologies as the base of better crop’ productivity in Russia. FEBS OpenBio 9 (Suppl.1), P. 280-281. https://doi.org/10.1002/2211-5463.12675
39. Sukhikh N, Malyarovskaya V, Kamionskaya A, Samarina L, Vinogradova S. Genetic Variation in Hydrangea macrophylla (Thunb.) SER. in Russia Based on Simple Sequence Repeat Markers // Bangladesh Journal of Botany. 2018. Vol. 47(4) p. 937-943
40. Курченко В.П., Радевич (Буткевич) Т.В., Ризевский С.В., Варламов В.П., Яковлева И.В., Тихонов В.Е., Алиева Л.Р. Влияние молекулярной массы хитозана на взаимодействие с казеином // Прикладная биохимия и микробиология/ 2018. Т.54. №5. С. 501-505. doi 10.1134/S0555109918050112
41. Детекция и идентификация ГМО растительного происхождения методом полимеразной цепной реакции в матричном формате. МУК 4.2.3390-16. Методические указания. 2017. – 36 с. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора. Тираж. 500 экз. ISBN 978-5-7508-1527-2
42. V. Porotikova, U. D. Dmitrenko, E.E. Atapina, Y.A. Volkov, V.I. Risovannaya, E.P. Stranishevskaya, S.M. Gorislavets, A.M. Kamionskaya, S.V Vinogradova. First Report of the Bacterial Leaf Spot Caused by Pseudomonas syringae on Grapevine (Vitis vinifera) in Russia // Plant Disease. 2017. Vol. 101(2) P. 380-380. doi 10.1094/PDIS-07-16-1040-PDN
43. Хазигалеева Р.А., Виноградова С.В., Петрова В.Л., Фесенко И.А., Арапиди Г.П., Камионская А.М., Говорун В.М., Иванов В.Т. Антимикробная активность эндогенных пептидов мха Physcomitrella patens // Биоорганическая химия. 2017. Т. 43. №3. С. 250-256. doi 10.7868/S0132342317030071
44. Варламов В.П., Яковлева И.В. 14 ШОРЫГИНСКИЕ ЧТЕНИЯ 2017 Г // Прикладная биохимия и микробиология. 2017. Т. 53. №5. С. 544-545. doi 10.7868/S0555109917050075
45. Е.В. Поротикова, В.И. Рисованная, Я.А. Волков, Ю.Д. Дмитренко, В.А. Володин, С.М. Гориславец, Е.П. Странишевская, А.А. Аграновский, А.М. Камионская, С.В. Виноградова. Распространение вирусов скручивания листьев винограда 1 И 3 (GRAPEVINE LEAFROLL-ASSOCIATED VIRUSES-1 И -3) на территории Крыма // Вестник Московского университета. Серия 16: Биология. №2. С. 13-16
46. Elena Porotikova, Uliana Dmitrenko, Vitalii Volodin, Yakov Volkov, Svetlana Gorislavets, Elena Stranishevskaya, Valentina Risovannaya, Anastasia Kamionskaya, Svetlana Vinogradova. First Report of Grapevine virus A in Russian Grapevines // 2016. Vol. 100(12). P. 2541-2541. doi 10.1094/PDIS-06-16-0804-PDN
47. D. Dmitrenko, E.V. Porotikova, S.M. Gorislavets, V.I. Risovannaya, Y.A. Volkov, E.P. Stranishevskaya, A.M. Kamionskaya, S.V Vinogradova. First Report of Grapevine Rupestris stem pitting associated virus in Russia // Plant Disease. 2016. Vol. 100(12). P. 2542-2542. doi 10.1094/PDIS-06-16-0805-PDN
48. Варламов В.П., Яковлева И.В. Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана // Прикладная биохимия и микробиология. 2016. Т. 52. №5. С. 447-447 doi 10.7868/S0555109916050172
49. Волков Я.А., Рисованная В.И., Гориславец С.М., Володин В.А., Камионская А.М., Виноградова С.В., Странишевская Е.П. распространение вирусных и бактериальных фитопатогенов на виноградниках юго-западной зоны Крыма // Виноградарство и виноделие. 2015. №4. С. 27-28
50. Поротикова Е.В., Виноградова С.В., Дмитренко Ю.Д., Волков Я.А., Рисованная В.И., Гориславец С.М., Володин В.А., Странишевская Е.П., Камионская А.М. Молекулярная диагностика бактериальных и вирусных фито-патогенов винограда, актуальных для сельского хозяйства Крыма // Виноградарство и виноделие. 2015. №3. С. 19-19
51. И.В. Яковлева, С.В. Виноградова, А. М. Камионская. Государственное регулирование оборота биотехнологической (ГМ) сельскохозяйственной продукции: анализ различных подходов в мировой практике // Экологическая генетика. 2015. Т. 13. №2. С. 21-35 doi 10.1134/S2079059716060095
52. Зубарева И.А., Головешкина Е.Н., Виноградова С.В., Грибова Т.Н., Монахос С.Г., Игнатов А.Н. Создание дигаплоидных линий Brassica napus – доноров устойчивости к вирусу мозаики турнепса // Сельскохозяйственная биология. 2013. Т48. №5. С. 122-125
53. Глинушкин А.П., Белошапкина О.О., Виноградова С.В., Николаев Н.А. Диагностика вирусных симптомов у сортообразцов озимой пшеницы из ВНИИР // Достижения науки и техники АПК. 2013. №2. С 24-26
54. Зубарева И.А., Виноградова С.В., Грибова Т.Н., Монахос С.Г., Скрябин К.Г., Игнатов А.Н. Генетическое разнообразие вируса мозаики турнепса и механизм его передачи семенами растений рода Brassica // Доклады Академии наук. Биохимия и биофизика. 2013. Т.450. №1. С. 105-108
55. Glinushkin A.P., Beloshapkina O.O., Vinogradova S.V., Nikolaev N.A. Monitoring of virus symptoms in winter wheat variety sample from the collection of all Russian institute of plant industry named after N.I. Vavilov // Вестник Орловского государственного аграрного университета. 2013. Т. 41. №2. С. 11-16
56. Е. Н. Головешкина, О. А. Шульга, А. В. Щенникова, А. М. Камионская, К. Г. Скрябин. Функциональные особенности гомологов Sepallata 3 из хризантемы cdm77 и cdm44 в трансгенных растениях табака // Доклады Академии наук. Биохимия и биофизика. 2012. Т.443. №1. С.132-135. doi 10.1134/S0012496612020020
57. Виноградова С.В., Камионская А.М., Зиновкин Р.А., Аграновский А.А., Скрябин К.Г. Использование технологии экспрессии в растениях кДНК гена структурного белка оболочки вируса желтухи свеклы для получения трансгенной устойчивости // Доклады Академии наук. Биохимия и биофизикаю. 2012. Т.443. №2. С. 240-242. doi 10.1134/S160767291202007X
58. Goloveshkina E.N., Shchennikova A.V., Kamionskaya A.M., Skryabin K.G., Shulga O.A. Influence of ectopic expression of asteraceae MADS box genes on plant ontogeny in tobacco // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2012. Vol. 109(1). P. 61-71 doi 10.1007/s11240-011-0074-9
59. Study of Structural and Rheological Properties of Starch Isolated from Genetically Modified Potato A. V. Kanarskii, Z. A. Kanarskaya, D. Sh. Yagofarov, L. A. Wasserman, V. G. Vasil’ev, K. G. Skryabin, and A. M. Kamionskaya Applied Biochemistry and Microbiology, 2011, Vol. 47, No. 9, pp. 827–832.
60. Ignatov AN, Kyrova EI, Vinogradova SV, Kamionskaya AM, Schaad NW, Luster DG. 2015. Draft genome sequence of Xanthomonas arboricola strain 3004, a causal agent of bacterial disease on barley. Genome Announc 3(1):e01572-14. doi:10.1128/genomeA.01572-14
61. Грибова Т.Н., Князев А.Н., Камионская А.М. Создание гаплоидных растений масличного рапса Brassica napus с использованием культуры микроспор. // Биотехнология, 2012.№2, C.59-65
62. Genetically Transforming Russian Potato Cultivars for Resistance to Colorado Beetle Anastasia M. Kamionskaya, Boris B. Kuznetsov, Vladimir Y. Ismailov, Vladimir D. Nadikta and Konstantin G. Skryabin 2012
63. С.В. Виноградова, А.Л. Ракитин, А.М. Камионская, А.А. Аграновский, Н.В. Равин, И.Г. Атабеков академик К.Г. Скрябин Использование 3’нетранслируемой области рнк геномов вируса некротического пожелтения жилок свеклы и вируса желтухи свеклы в качестве индукторов посттранскрипционного умолкания генов. Доклады академии наук, 2011, том 439, № 6, с. 831–834, http://www.omicsgroup.org/journals/ArchiveCTG/articleinpressCTG.php
64. B. Neskorodov, А.М. Kamionskaya, K.G. Skryabin. Agrobacterium-mediated transformation of sunflower (Helianthus annuus L.) using direct shoot regeneration protocol. Sunflowers: cultivation, nutrition, and biodiesel uses. 2010. Editors: Victor C. Hughes. NOVA publishers. ISBN: 978-1-61209-325-3
65. Головешкина Е. Н., Шульга О. А, Щенникова А. В., Камионская А. М., академик Скрябин К. Г. Конститутивная экспрессия генов подсолнечника и хризантемы группы AP1/FUL вызывает изменение сроков цветения у трансгенных растений табака. Доклады Академии Наук, 2010, том 434, № 2, с. 275–278
66. B. Neskorodov, A. L. Rakitin, A. M. Kamionskaya, K. G. Skryabin. Developing phosphinothricin-resistant transgenic sunflower (Helianthus annuus L.) plants. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2010 100:65–71.
67. Мишуткина Я.В., Камионская А.М., Скрябин К.Г. Создание трансгенных растений сахарной свеклы, экспрессирующих ген bar. Прикладная биохимия и микробиология. 2010, т. 46. № 1: с. 80-86.
68. Задорин А.С., Сухачева М.В., Кузнецов Б.Б., Грибова Т.Н., Камионская А.М., Скрябин К.Г. Анализ геномного окружения трансгенных вставок в модифицированных растениях картофеля и капусты белокочанной. Биотехнология. №6. 2008. С.15-22
69. Задорин А.С., Сухачева М.В., Кузнецов Б.Б., Камионская А.М., Скрябин К.Г. Идентификация уникального трансформационного события картофеля сорта «Елизавета», устойчивого к колорадскому жуку. Биотехнология. № 3, c.34, 2008.
70. Гайдукова С.Е., Ракитин А.Л., Равин Н.В., Скрябин К.Г., А.М. Камионская. Разработка системы генетической трансформации растений ряски малой, Lemna minor «Экологическая генетика», 2008 Т.6 выпуск 4. с. 20-28.
71. Е.В. Дьякова, А.Л. Ракитин, А.М. Камионская, А.А. Байков, Р. Лахти, Н.В. Равин, К.Г. Скрябин «Изучение влияния экспрессии гена мембранной H+-пирофосфатазы Rhodospirillum rubrum на уровень солеустойчивости трансгенных растений табака» Доклады Академии наук, 2006, том 409, №6, с.844-846.

1. Проведение работ по оценке агрономической эффективности и механизма действия удобрений, регуляторов роста, элиситоров в закрытом грунте и аэропонных системах
2. Проведение опытов по тестированию по устойчивости к засолению, засухе и воздействию бактериальных и грибных токсинов
3. Проведение работ по генетической трансформации и редактированию растений
4. Оценка фунгицидного воздействия препаратов на проростках в условиях in vitro и растениях в условиях закрытого грунта
5. Адаптация культур растений к условиям in vivo
6. Микроклональное размножение культур растений
7. Стажировка по фитопатологическим, биотехнологическим и молекулярным методам
8. Иные услуги, выполнение которых возможно с использованием имеющегося оборудования