THE FULL LIST OF PUBLICATIONS
of the Research Centre of Biotechnology RAS
in 2019
(in all languages)
1. Sorokin D.Y., Makarova K.S., Abbas B., Ferrer M., Golyshin P.N., Galinski E.A., Ciorda S., Carmen Mena M., Merkel A.Y., Wolf Y.I., van Loosdrecht M.C.M., Koonin E.V. Reply to ‘Evolutionary placement of Methanonatronarchaeia’ // Nature Microbiology. 2019, v. 4, p. 560-561, doi: 10.1038/s41564-019-0358-0.
2. Prokhortchouk E, Skryabin KG, Johansson M, Carreras-Torres R, Scelo G, Purdue MP, Mariosa D, Muller DC, Timpson NJ, Haycock PC, Brown KM, Wang Z, Ye Y, Hofmann JN, Foll M, Gaborieau V, Machiela MJ, Colli LM, Li P, Garnier JG, Blanche H, Boland A, Burdette L, Yeager M, Radojevic-Skodric S, Ognjanovic S, Foretova L, Holcatova I, Janout V, Mates D, Mukeriya A, Rascu S, Zaridze D, Bencko V, Cybulski C, Fabianova E, Jinga V, Lissowska J, Lubinski J, Navratilova M, Rudnai P, Benhamou S, Cancel-Tassin G, Cussenot O, Weiderpass E, Ljungberg B, Tumkur Sitaram R, Häggström C, Bruinsma F, Jordan SJ, Severi G, Winship I, Hveem K, Vatten LJ, Fletcher T, Larsson SC, Wolk A, Banks RE, Selby PJ, Easton DF, Andreotti G, Beane Freeman LE, Koutros S, Männistö S, Weinstein S, Clark PE, Edwards TL, Lipworth L, Gapstur SM, Stevens VL, Carol H, Freedman ML, Pomerantz MM, Cho E, Wilson KM, Gaziano JM, Sesso HD, Freedman ND, Parker AS, Eckel-Passow JE, Huang WY, Kahnoski RJ, Lane BR, Noyes SL, Petillo D, Teh BT, Peters U, White E, Anderson GL, Johnson L, Luo J, Buring J, Lee IM, Chow WH, Moore LE, Eisen T, Henrion M, Larkin J, Barman P, Leibovich BC, Choueiri TK, Lathrop GM, Deleuze JF, Gunter M, McKay JD, Wu X, Houlston RS, Chanock SJ, Relton C, Richards JB, Martin RM, Davey Smith G, Brennan P. The influence of obesity-related factors in the etiology of renal cell carcinoma-A mendelian randomization study // PLoS Medicine. 2019, v. 16, № 1, # e1002724, p. 1-16, doi: 10.1371/journal.pmed.1002724.
3. Korzhenkov AA, Toshchakov SV, Bargiela R, Gibbard H, Ferrer M, Teplyuk AV, Jones DL, Kublanov IV, Golyshin PN, Golyshina OV. Archaea dominate the microbial community in an ecosystem with low-to-moderate temperature and extreme acidity // Microbiome. 2019, v. 7, # 11, doi: 10.1186/s40168-019-0623-8.
4. Kurtina Daria A., Alexey V. Garshev, Irina S. Vasil’eva, Vladimir V. Shubin, Alexander M. Gaskov, Roman B. Vasiliev. Atomically thin population of colloidal CdSe nanoplatelets: growth of rolled-up nanosheets and strong circular dichroism induced by ligand exchange // Chemistry of Materials. 2019, v. 31, p. 9652-9663, doi: 10.1021/acs.chemmater.9b02927.
5. Wald J., Pasin M., Richter M., Walther C., Mathai N., Kirchmair J., Makarov V.A., Goessweiner-Mohr N., Marlovits T.C., Zanella I., Real-Hohn A., Verdaguer N., Blaas D., Schmidtke M. Cryo-EM structure of pleconaril-resistant rhinovirus-B5 complexed to the antiviral OBR-5-340 reveals unexpected binding site // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2019, v. 116, № 38, # 201904732, p. 19109-19115, doi: 10.1073/pnas.1904732116.
6. Frolov Evgenii N., Ilya V. Kublanov, Stepan V. Toshchakov, Evgenii A. Lunev, Nikolay V. Pimenov, Elizaveta A. Bonch-Osmolovskaya, Alexander V. Lebedinsky, Nikolay A. Chernyh. Form III RubisCO-mediated transaldolase variant of the Calvin cycle in a chemolithoautotrophic bacterium // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2019, v. 116, № 37, p. 18638-18646, doi: 10.1073/pnas.1904225116.
7. Tveit Alexander T., Anne Grethe Hestnes, Serina L. Robinson, Arno Schintlmeister, Svetlana N. Dedysh, Nico Jehmlich, Martin von Bergen, Craig Herbold, Michael Wagner, Andreas Richter, Mette M. Svenning. Widespread soil bacterium that oxidizes atmospheric methane // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2019, v. 116, № 17, p. 8515-8524, doi: 10.1073/pnas.1817812116.
8. Karnachuk O.V, Frank Y.A, Lukina A.P, Kadnikov V.V, Beletsky A.V, Mardanov A.V, Ravin N.V. Domestication of previously uncultivated Candidatus Desulforudis audaxviator from a deep aquifer in Siberia sheds light on its physiology and evolution // ISME Journal. 2019, v. 13, № 8, p. 1947-1959, doi: 10.1038/s41396-019-0402-3.
9. Antonov IV, Mazurov E, Borodovsky M, Medvedeva YA. Prediction of lncRNAs and their interactions with nucleic acids: benchmarking bioinformatics tools // Briefings in Bioinformatics. 2019, v. 20, № 2, p. 551-564, doi: 10.1093/bib/bby032.
10. Khlebtsov B.N., Bratashov D.N., Byzova N.A., Dzantiev B.B., Khlebtsov N.G. SERS-based lateral flow immunoassay of troponin I using gap-enhanced Raman tags // Nano Research. 2019, v. 12, № 2, p. 413-420, doi: 10.1007/s12274-018-2232-4.
11. Gordienko Mariia G., Vera V. Palchikova, Sergei V. Kalenov, Alexey A. Belov, Veronika N. Lyasnikova, Daniil Y. Poberezhniy, Alina V. Chibisova, Vladimir V. Sorokin, Dmitry A. Skladnev. Antimicrobial activity of silver salt and silver nanoparticles in different forms against microorganisms of different taxonomic groups // Journal of Hazardous Materials. 2019, v. 378, # 120754, p. 1-11, doi: 10.1016/j.jhazmat.2019.120754.
12. de Rink R., Klok J.B.M., van Heeringen G.J., Sorokin D.Y., ter Heijne A., Zeijlmaker R., Mos Y.M., de Wilde V., Keesman K.J., Buisman C.J.N. Increasing the selectivity for sulfur formation in biological gas desulfurization // Environmental Science and Technology. 2019, v. 53, p. 4519-4527, doi: 10.1021/acs.est.8b06749.
13. Puhl A.C., Garzino Demo A., Makarov V.A., Ekins S. New targets for HIV drug discovery // Drug Discovery Today. 2019, v. 24, № 5, p. 1139-1147, doi: 10.1016/j.drudis.2019.03.013.
14. Vavourakis C.D., Mehrshad M., Balkema C., van Hall R., Andrei A-S., Ghai R., Sorokin D.Y., Muyzer G. Metagenomes and metatranscriptomes shed new light on the microbial-mediated sulfur cycle in a Siberian soda lake // BMC Biology. 2019, № 17, # 69, doi: 10.1186/s12915-019-0688-7.
15. Short S.P., Barrett C.W., Stengel K.R., Revetta F.L., Choksi Y.A., Coburn L.A., Lintel M.K., McDonough E.M., Washington M.K., Wilson K.T., Prokhortchouk E., Chen X., Hiebert S.W., Reynolds A.B., Williams C.S. Kaiso is required for MTG16-dependent effects on colitis-associated carcinoma // Oncogene. 2019, v. 38, № 25, p. 5091-5106, doi: 10.1038/s41388-019-0777-7.
16. Berlina A.N., Komova N.S., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Application of aptamers for the determination of heavy metals // Molecular Therapy-Nucleic Acids. 2019, v. 17, suppl. 1, p. 15-16, doi: 10.1016/j.omtn.2019.07.010.
17. Safenkova I.V., Samokhvalov A.V., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. New opportunities of aptamers’ use in assays of mycotoxins // Molecular Therapy-Nucleic Acids. 2019, v. 17, suppl. 1, p. 15-15, doi: 10.1016/j.omtn.2019.07.010.
18. Berlina A.N., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Progress in rapid optical assays for heavy metal ions based on the use of nanoparticles and receptor molecules // Microchimica Acta. 2019, v. 186, № 3, # 172, doi: 10.1007/s00604-018-3168-9.
19. Ivanov A.V., Safenkova I.V., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Recombinase polymerase amplification combined with a magnetic nanoparticle-based immunoassay for fluorometric determination of troponin T // Microchimica Acta. 2019, v. 186, № 8, # 549, doi: 10.1007/s00604-019-3686-0.
20. Altınelataman Can, Olga Koroleva, Tatyana Fedorova, Anna Torkova, Ksenia Lisitskaya, Mikhail Tsentalovich, Aleksey Kononikhin, Igor Popov, Daria Vasina, Leonid Kovalyov, Ufuk Çelik. An in vitro and in silico study on the antioxidant and cell culture-based study on the chemoprotective activities of fish muscle protein hydrolysates obtained from European seabass and gilthead seabream // Food Chemistry. 2019, v. 271, p. 724-732, doi: 10.1016/j.foodchem.2018.08.004.
21. Sergey Y. Bershitsky, Daria S. Logvinova, Daniil V. Shchepkin, Galina V. Kopylova, Alexander M. Matyushenko. Myopathic mutations in the β-chain of tropomyosin differently affect the structural and functional properties of ββ- and αβ-dimers // FASEB Journal. 2019, v. 33, № 2, p. 1 963-1 971, doi: 10.1096/fj.201800755R.
22. Camilla L. Nesbø, Rhianna Charchuk, Stephen M. J. Pollo, Karen Budwill, Ilya V. Kublanov, Thomas H.A. Haverkamp, Julia Foght. Genomic analysis of the mesophilic Thermotogae genus Mesotoga reveals phylogeographic structure and genomic determinants of its distinct metabolism // Environmental Microbiology. 2019, v. 21, № 1, p. 456-470, doi: 10.1111/1462-2920.14477.
23. Isupov M.N., Boyko K.M., Sutter J-M., James P., Sayer C., Schmidt M., Schönheit P., Nikolaeva A.Yu., Stekhanova T.N., Mardanov A.V., Ravin N.V., Bezsudnova E.Yu., Popov V.O., Littlechild J.A. Thermostable Branched-Chain Amino Acid Transaminases From the Archaea Geoglobus acetivorans and Archaeoglobus fulgidus: Biochemical and Structural Characterization // Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2019, v. 7, # 7, p. 1-16, doi: 10.3389/fbioe.2019.00007.
24. Safenkova I.V., Panferov V.G., Panferova N.A., Varitsev Y.A., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Alarm lateral flow immunoassay for detection of the total infection caused by the five viruses // Talanta. 2019, v. 195, p. 739-744, doi: 10.1016/j.talanta.2018.12.004.
25. Kozhina EA, Ershova ES, Okorokova NA, Veiko VP, Malinovskaya EM, Sergeeva VA, Konkova MS, Kutsev SI, Veiko NN, Kostyuk SV. Extracellular DNA Containing (dG)n Motifs Penetrates into MCF7 Breast Cancer Cells, Induces the Adaptive Response, and Can Be Expressed // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2019, v. 2019, # 7853492, p. 1-16, doi: 10.1155/2019/7853492.
26. Kostyuk SV, Mordkovich NN, Okorokova NA, Veiko VP, Malinovskaya EM, Ershova ES, Konkova MS, Savinova EA, Borzikova MA, Muzaffarova TA, Porokhovnik LN, Veiko NN, Kutsev SI. Increased Transfection of the Easily Oxidizable GC-Rich DNA Fragments into the MCF7 Breast Cancer Cell // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2019, v. 2019, # 2348165, p. 1-15, doi: 10.1155/2019/2348165.
27. Filev AD, Shmarina GV, Ershova ES, Veiko NN, Martynov AV, Borzikova MA, Poletkina AA, Dolgikh OA, Veiko VP, Bekker AA, Chirkov AV, Volynshchikov ZN, Deviataikina AS, Shashin DM, Puretskiy VK, Tabakov VJ, Izhevskaya VL, Kutsev SI, Kostyuk SV, Umriukhin PE. Oxidized Cell-Free DNA Role in the Antioxidant Defense Mechanisms under Stress // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2019, v. 2019, № 8, # 1245749, p. 1-13, doi: 10.1155/2019/1245749.
28. Shumaev K.B., Gorudko I.V., Kosmachevskaya O., Grigoryeva D., Panasenko O.M., Vanin A., Topunov A., Terekhova M., Sokolov A., Cherenkevich S.N., Ruuge E.K. Protective effect of dinitrosyl iron complexes with glutathione in red blood cell lysis induced by hypochlorous acid // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2019, v. 2019, # 2798154, p. 1-12, doi: 10.1155/2019/2798154.
29. Egorova A., Ekins S., Schmidtke M., Makarov. Back to the Future: Advances in Development of Broad-Spectrum Capsid-Binding Inhibitors of Enteroviruses // European Journal of Medicinal Chemistry. 2019, v. 178, p. 606-622, doi: 10.1016/j.ejmech.2019.06.008.
30. Balzhima Shagdarova, Alexey Lunkov, Alla Il’ina, Valery Varlamov. Investigation of the Properties of N-((2-Hydroxy-3-Trimethylammonium) Propyl) Chloride Chitosan Derivatives // International Journal of Biological Macromolecules. 2019, v. 124, p. 994-1001, doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.11.209.
31. Chebotareva N.A., Eronina T.B., Roman S.G., Mikhaylova V.V., Kleymenov S.Y., Kurganov B.I. Kinetic regime of Ca2+ and Mg2+-induced aggregation of phosphorylase kinase at 40 °C // International Journal of Biological Macromolecules. 2019, v. 138, p. 181-187, doi: 10.1016/j.ijbiomac.2019.06.240.
32. Knirel YA, Ivanov PA, Senchenkova SN, Naumenko OI, Ovchinnikova OO, Shashkov AS, Golomidova AK, Babenko VV, Kulikov EE, Letarov AV. Structure and gene cluster of the O antigen of Escherichia coli F17, a candidate for a new O-serogroup. // International Journal of Biological Macromolecules. 2019, v. 15, № 124, # 30448500, p. 389-395, doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.11.149.
33. Alexander M. Matyushenko, Natalia A. Koubassova, Daniil V. Shchepkin, Galina V. Kopylova, Salavat R. Nabiev, Larisa V. Nikitina, Sergey Y. Bershitsky, Dmitrii I. Levitsky, Andrey K. Tsaturyan. The effects of cardiomyopathy-associated mutations in the head-to-tail overlap junction of α-tropomyosin on its properties and interaction with actin // International Journal of Biological Macromolecules. 2019, v. 125, p. 1266-1274, doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.09.105.
34. Muranov K.O., N.B. Poliansky, N.A. Chebotareva, S.Yu. Kleimenov, A.E. Bugrova, M.I. Indeykina, A.S. Kononikhin, E.N. Nikolaev, M.A. Ostrovsky. The mechanism of the interaction of α-crystallin and UV-damaged βL-crystallin // International Journal of Biological Macromolecules. 2019, v. 140, p. 736-748, doi: 10.1016/j.ijbiomac.2019.08.178.
35. Slonimskiy YB, Muzzopappa F, Maksimov EG, Wilson A, Friedrich T, Kirilovsky D, Sluchanko NN. Light-controlled carotenoid transfer between water-soluble proteins related to cyanobacterial photoprotection // FEBS Journal. 2019, v. 286, № 10, p. 1 908-1 924, doi: 10.1111/febs.14803.
36. Tsvetkov Vladimir B., Timofei S.Zatsepin, Anton V.Turaev, Valentina M.Farzan, Pozmogova, Andrey V.Aralov, Anna M.Varizhuk. DNA i-Motifs With Guanidino-i-Clamp Residues: The Counterplay Between Kinetics and Thermodynamics and Implications for the Design of pH Sensors // Computational and Structural Biotechnology Journal. 2019, v. 17, p. 527-536, doi: 10.1016/j.csbj.2019.04.006.
37. Kryukova M. V., Petrovskaya L.E., Kryukova E.A., Lomakina G.Yu., Yakimov S.A., Maksimov E.G., Boyko K.M., Popov V.O., Dolgikh D.A., Kirpichnikov M.P. Thermal Inactivation of a Cold-Active Esterase PMGL3 Isolated from the Permafrost Metagenomic Library // Biomolecules. 2019, v. 9, № 12, # 880, p. 1-13, doi: 10.3390/biom9120880.
38. Коц Е.Д., Хренова М.Г., Немухин А.В., Варфоломеев С.Д. Аспартоацилаза-фермент центральной нервной системы: структура, каталитическая активность, механизмы регуляции // Успехи химии. 2019, т. 88, № 1, c. 1-26, doi: 10.1070/RCR4842.
39. Mohammad Ghashghavi, Svetlana E. Belova, Paul L. E. Bodelier, Svetlana N. Dedysh, Martine A. R. Kox, Daan R. Speth, Peter Frenzel, Mike S. M. Jetten, Sebastian Lücker, Claudia Lüke. Methylotetracoccus oryzae Strain C50C1 Is a Novel Type Ib Gammaproteobacterial Methanotroph Adapted to Freshwater Environments // mSphere. 2019, v. 4, № 5, # 00631-18, p. 1-15, doi: 10.1128/mSphere.00631-18.
40. Klementiev KE, Maksimov EG, Gvozdev DA, Tsoraev GV, Protopopov FF, Elanskaya IV, Abramov SM, Dyakov MY, Ilyin VK, Nikolaeva NA, Moisenovich MM, Moisenovich AM, Slonimskiy YB, Sluchanko NN, Lebedev VM, Spassky AV, Friedrich T, Maksimov GV, Paschenko VZ, Rubin AB. Radioprotective role of cyanobacterial phycobilisomes // Biochimica Et Biophysica Acta-Bioenergetics. 2019, v. 1860, № 2, p. 121-128, doi: 10.1016/j.bbabio.2018.11.018.
41. Zlenko D. V., Elanskaya I.V., Lukasheva E.P., Bolychevtseva Y.V., Suzina N.E., Pojidaeva E.S., Kononova I.A., Loktyushkin A.V., Stadnichukd I.N. Role of the PB-loop in ApcE and Phycobilisome Core Function in Cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803 // Biochimica Et Biophysica Acta-Bioenergetics. 2019, v. 1860, № 2, p. 155-166, doi: 10.1016/j.bbabio.2018.10.004.
42. Zorn K.M., Lane T.R., Russo D.P., Clark A.M., Makarov V., Ekins S. Multiple Machine Learning Comparisons of HIV Cell-based and Reverse Transcriptase Data Sets // Molecular Pharmaceutics. 2019, v. 16, № 4, p. 1 620-1 632, doi: 10.1021/acs.molpharmaceut.8b01297.
43. Berlina A.N., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. ELISA and lateral flow immunoassay for the detection of food colourants: State of the art // Critical Reviews in Analytical Chemistry. 2019, v. 49, № 3, p. 209-223, doi: 10.1080/10408347.2018.1503942.
44. Mindlin S, Beletsky A, Mardanov A, Petrova M. Adaptive dif modules in permafrost strains of Acinetobacter lwoffii and their distribution and abundance among present day Acinetobacter strains // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 632, doi: 10.3389/fmicb.2019.00632.
45. Tsallagov S.V., Sorokin D.Y., Tikhonova T.V., Popov V.O., Muyzer G. Comparative genomics of Thiohalobacter thiocyanaticus HRh1T and Guyparkeria sp. SCN-R1, halophilic chemolithoautotrophic sulfur-oxidizing Gammaproteobacteria capable of using thiocyanate as energy source // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 898, doi: 10.3389/fmicb.2019.00898.
46. Gannesen Andrei V., Zdorovenko Evelina L., Botchkova Ekaterina A., Hardouin Julie, Massier Sebastien, Kopitsyn Dmitry S., Gorbachevskii Maxim V., Kadykova Alexandra A., Shashkov Alexander S., Zhurina Marina V., Netrusov Alexander I., Knirel Yuriy A., Plakunov Vladimir K., Feuilloley Marc G. J. Composition of the Biofilm Matrix of Cutibacterium acnes Acneic Strain RT5 // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 1284, doi: 10.3389/fmicb.2019.01284.
47. Berben T., Overmars L., Sorokin D.Y., Muyzer G. Diversity and distribution of sulfur oxidation-related genes in Thioalkalivibrio, a genus of chemolithoautotrophic and haloalkaliphilic sulfur-oxidizing bacteria // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 160, p. 1-15, doi: 10.3389/fmicb.2019.00160.
48. Savinova O.S., Moiseenko K.V., Vavilova E.A., Chulkin A.M., Fedorova T.V., Tyazhelova T.V., Vasina D.V. Evolutionary relationships between the laccase genes of Polyporales: orthology-based classification of laccase isozymes and functional insight from Trametes hirsuta // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 152, p. 1-14, doi: 10.3389/fmicb.2019.00152.
49. Bale Nicole J., Rijpstra W. Irene C., Sahonero-Canavesi Diana X., Oshkin Igor Y., Belova Svetlana E., Dedysh Svetlana N., Sinninghe Damsté Jaap S. Fatty Acid and Hopanoid Adaption to Cold in the Methanotroph Methylovulum psychrotolerans // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 589, p. 1-13, doi: 10.3389/fmicb.2019.00589.
50. Mardanov A.V, Beletsky A.V, Ravin N.V, Botchkova E.A, Litti Y.V, Nozhevnikova A.N. Genome of a novel bacterium “Candidatus Jettenia ecosi” reconstructed from the metagenome of an anammox bioreactor // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 2442, doi: 10.3389/fmicb.2019.02442.
51. Koziaeva V, Dziuba M, Leão P, Uzun M, Krutkina M, Grouzdev D. Genome-Based Metabolic Reconstruction of a Novel Uncultivated Freshwater Magnetotactic coccus “Ca. Magnetaquicoccus inordinatus” UR-1, and Proposal of a Candidate Family “Ca. Magnetaquicoccaceae”. // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 2290, p. 1-20, doi: 10.3389/fmicb.2019.02290.
52. Kabanova Anastasia P., Mikhail M. Shneider, Aleksei A. Korzhenkov, Eugenia N. Bugaeva, Kirill K. Miroshnikov, Evelina L. Zdorovenko, Eugene E. Kulikov, Stepan V. Toschakov, Alexander N. Ignatov, Yuriy A. Knirel, Konstantin A. Miroshnikov. Host Specificity of the Dickeya Bacteriophage PP35 Is Directed by a Tail Spike Interaction With Bacterial O-Antigen, Enabling the Infection of Alternative Non-pathogenic Bacterial Host // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 9, # 3288, doi: 10.3389/fmicb.2018.03288.
53. Gavrilov SN, Korzhenkov AA, Kublanov IV, Bargiela R, Zamana LV, Popova AA, Toshchakov SV, Golyshin PN, Golyshina OV. Microbial Communities of Polymetallic Deposits’ Acidic Ecosystems of Continental Climatic Zone With High Temperature Contrasts // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 1573, doi: 10.3389/fmicb.2019.01573.
54. Bale N.J., Sorokin D.Y., Hopmans E.C., Koenen M., Rijpstra W.I.C., Villanueva L., Wienk H., Sinninghe Damste J.S. New insights into the polar lipid composition of extremely halo(alkali)philic euryarchaea from hypersaline lakes. // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 377, p. 1-24, doi: 10.3389/fmicb.2019.00377.
55. Spring S., Sorokin D.Y., Verbarg S., Rohde M., Woyke T., Kyrpides N.C. Sulfate-reducing bacteria that produce exopolymers thrive in the calcifying zone of a hypersaline cyanobacterial mat. // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 862, doi: 10.3389/fmicb.2019.00862.
56. Ahn A.-C., Cavalca L., Colombo M., Schuurmans M., Sorokin D.Y., Muyzer G. Transcriptomic analysis of two Thioalkalivibrio species under arsenite stress revealed a potential candidate gene for an alternative arsenite oxidation pathway // Frontiers in Microbiology. 2019, v. 10, # 1514, doi: 10.3389/fmicb.2019.01514.
57. Buglak A.A., Shanin I.A., Eremin S.A., Lei H., Li X., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Ciprofloxacin and clinafloxacin antibodies for an immunoassay of quinolones: Quantitative structure-activity analysis of cross-reactivities // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 2, # 265, doi: 10.3390/ijms20020265.
58. Bashirova Anna, Subrata Pramanik, Pavel Volkov, Alexandra Rozhkova, Vitaly Nemashkalov, Ivan Zorov, Alexander Gusakov, Arkady Sinitsyn, Ulrich Schwaneberg, Mehdi D. Davari. Disulfide Bond Engineering of an Endoglucanase from Penicillium verruculosum to Improve Its Thermostability // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 7, # E1602, doi: 10.3390/ijms20071602.
59. Shishkin S.S., Kovalev L.I., Pashintseva N.V., Kovaleva M. A., Lisitskaya K. Heterogeneous nuclear ribonucleoproteins involved in the functioning of telomeres in malignant cells // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 3, # 745, doi: 10.3390/ijms20030745.
60. Glazunova O.A., Moiseenko K.V., Kamenihina I.A., Isaykina T.U., Yaropolov A.I., Fedorova T.V. Laccases with Variable Properties from Different Strains of Steccherinum ochraceum: Does Glycosylation Matter? // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 8, # 2008, p. 1-9, doi: 10.3390/ijms20082008.
61. Atroshenko D.L., Shelomov M.D., Zarubina S.A., Golubev I.V., Savin S.S., Tishkov V.I., Negru Nikita Y. Multipoint TvDAAO mutants for cephalosporin C bioconversion // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 18, # 4412, doi: 10.3390/ijms20184412.
62. Degiacomi G., Sammartino J.C., Chiarelli L.R., Riabova O., Makarov V., Pasca M.R. Mycobacterium abscessus, an emerging and worrisome pathogen among cystic fibrosis patients // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 23, # 5868, doi: 10.3390/ijms20235868.
63. Solovyev ID, AV Gavshina, AP Savitsky. Novel Phototransformable Fluorescent Protein SAASoti with Unique Photochemical Properties // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 14, # 3399, p. 1-10, doi: 10.3390/ijms20143399.
64. Gruzdev EV, Kadnikov VV, Beletsky AV, Kochieva EZ, Mardanov AV, Skryabin KG, Ravin NV. Plastid Genomes of Carnivorous Plants Drosera rotundifolia and Nepenthes × ventrata Reveal Evolutionary Patterns Resembling Those Observed in Parasitic Plants // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 17, # E4107, doi: 10.3390/ijms20174107.
65. Dergalev AA, Alexandrov AI, Ivannikov R, Ter-Avanesyan MD, Kushnirov VV. Yeast Sup35 Prion Structure: Two Types, Four Parts, Many Variants // International Journal of Molecular Sciences. 2019, v. 20, № 11, # E2633, p. 1-19, doi: 10.3390/ijms20112633.
66. Agarkova Evgeniya Yu., Alexandr G. Kruchinin, Olga A. Glazunova, Tatyana V. Fedorova. Whey protein hydrolysate and pumpkin pectin as nutraceutical and prebiotic components in functional mousse with antihypertensive and bifidogenic properties // Nutrients. 2019, v. 11(12), # 2930, p. 1-13, doi: 10.3390/nu11122930.
67. Moiseenko Konstantin V., Olga A. Glazunova, Natalia V. Shakhova, Olga S. Savinova, Daria V. Vasina, Tatiana V. Tyazhelova, Nadezhda V. Psurtseva, Tatiana V. Fedorova. Fungal Adaptation to the Advanced Stages of Wood Decomposition: Insights from the Steccherinum ochraceum // Microorganisms. 2019, v. 7, № 11, # 527, p. 1-16, doi: 10.3390/microorganisms7110527.
68. Oshkin Igor Y., Kirill K. Miroshnikov, Olga V. Danilova, Anna Hakobyan, Werner Liesack, Svetlana N. Dedysh. Thriving in Wetlands: Ecophysiology of the Spiral‐ Shaped Methanotroph Methylospira mobilis as Revealed by the Complete Genome Sequence // Microorganisms. 2019, v. 7, # 683, p. 1-20, doi: 10.3390/microorganisms7120683.
69. Malinovskaya EM, Ershova ES, Okorokova NA, Veiko VP, Konkova MS, Kozhina EA, Savinova EA, Porokhovnik LN, Kutsev SI, Veiko NN, Kostyuk SV. Ribosomal DNA as DAMPs Signal for MCF7 Cancer Cells // Frontiers in Oncology. 2019, v. 9, # 4455, doi: 10.3389/fonc.2019.00445.
70. Dedysh S.N., Ivanova A.A. Planctomycetes in boreal and subarctic wetlands: diversity patterns and potential ecological functions // FEMS Microbiology Ecology. 2019, v. 95, № 2, # fiy227, p. 1-28, doi: 10.1093/femsec/fiy227.
71. Samylina O.S., Namsaraev Z.B., Grouzdev D.S., Slobodova N.V., Zelenev V.V., Borisenko G.V., Sorokin D.Y. The patterns of nitrogen fixation in haloalkaliphilic phototrophic communities of Kulunda Steppe soda lakes (Altai, Russia) // FEMS Microbiology Ecology. 2019, v. 95, № 11, # fiz174, doi: 10.1093/femsec/fiz174.
72. Lesouhaitier O., Clamens T., Rosay T., Desriac F., Louis M., Rodrigues S., Gannesen A., Plakunov V.K., Bouffartigues E., Tahrioui A., Bazire A., Dufour A., Cornelis P., Chevalier S., Feuilloley M.G.J. Host peptidic hormones affecting bacterial biofilm formation and virulence // Journal of Innate Immunity. 2019, v. 11, № 3, p. 227-241, doi: 10.1159/000493926
73. Youssef NH, Farag IF, Hahn CR, Jarett J, Becraft E, Eloe-Fadrosh E, Lightfoot J, Bourgeois A, Cole T, Ferrante S, Truelock M, Marsh W, Jamaleddine M, Ricketts S, Simpson R, McFadden A, Hoff W, Ravin NV, Sievert S, Stepanauskas R, Woyke T, Elshahed M. Genomic characterization of candidate division LCP-89 reveals an atypical cell wall structure, microcompartment production, and dual respiratory and fermentative capacities // Applied and Environmental Microbiology. 2019, v. 85, № 10, # e00110-19, p. 1 195-1 201, doi: 10.1128/AEM.00110-19
74. Maksimov EG, Yaroshevich IA, Tsoraev GV, Sluchanko NN, Slutskaya EA, Shamborant OG, Bobik TV, Friedrich T, Stepanov AV. A genetically encoded fluorescent temperature sensor derived from the photoactive Orange Carotenoid Protein // Scientific Reports. 2019, v. 9, # 8937, doi: 10.1038/s41598-019-45421-7.
75. Tugaeva Kristina V, Daria I Kalacheva, Richard B Cooley, Sergei V Strelkov, Nikolai N Sluchanko. Concatenation of 14-3-3 with partner phosphoproteins as a tool to study their interaction // Scientific Reports. 2019, v. 9, # 15007, p. 1-11, doi: 10.1038/s41598-019-50941-3.
76. Kulikov E.E., Golomidova A.K., Prokhorov N.S., Ivanov P.A., Letarov A.V. High-throughput LPS profiling as a tool for revealing of bacteriophage infection strategies // Scientific Reports. 2019, v. 9, # 2958, doi: 10.1038/s41598-019-39590-8.
77. Rubtsova M, Vasilkova D, Moshareva M, Malyavko A, Meerson M, Zatsepin T, Naraykina Y, Beletsky A, Ravin N, Dontsova O. Integrator is a key component of human telomerase RNA biogenesis // Scientific Reports. 2019, v. 9, # 1701, doi: 10.1038/s41598-018-38297-6.
78. Panyushkina Anna E., Vladislav V. Babenko, Anastasia S. Nikitina, Oksana V. Selezneva, Iraida A. Tsaplina, Maria A. Letarova, Elena S. Kostryukova, Andrey V. Letarov. Sulfobacillus thermotolerans: new insights into resistance and metabolic capacities of acidophilic chemolithotrophs // Scientific Reports. 2019, v. 9, # 15069, doi: 10.1038/s41598-019-51486-1.
79. Yurkova M.S., Sharapova O.A., Zenin V.A., Fedorov A.N. Versatile format of minichaperone-based protein fusion system // Scientific Reports. 2019, v. 9, # 15063, p. 1-11, doi: 10.1038/s41598-019-51015-0.
80. Suvorova Yu.M., Korotkova M.A., Skryabin K.G., Korotkov e.v. Search for potential reading frameshifts in cds from Arabidopsis thaliana and other genomes // DNA Research. 2019, v. 26, № 2, p. 157-170, doi: 10.1093/dnares/dsy046.
81. Akoulina E., Dudun A., Bonartsev A., Bonartseva G., Voinova V. Effect of bacterial alginate on growth of mesenchymal stem cells // International Journal of Polymeric Materials and Polymeric Biomaterials. 2019, v. 68, SI 1-3, doi: 10.1080/00914037.2018.1525730.
82. Alekseeva MG, Boyko KM, Nikolaeva AY, Mavletova DA, Rudakova NN, Zakharevich NV, Korzhenevskiy DA, Ziganshin RH, Popov V.O., Danilenko VN. Identification, functional and structural characterization of novel aminoglycoside phosphotransferase APH(3″)-Id from Streptomyces rimosus subsp. rimosus ATCC 10970 // Archives of Biochemistry and Biophysics. 2019, v. 671, p. 111-122, doi: 10.1016/j.abb.2019.06.008.
83. Alexandrov, AI, Grosfeld EV, Dergalev AA, Kushnirov, VV, Chuprov-Netochin RN, Tyurin-Kuzmin PA, Kireev II, Ter-Avanesyan MD, Leonov SV, Agaphonov MO. Analysis of novel hyperosmotic shock response suggests ‘beads in liquid’ cytosol structure // Biology Open. 2019, v. 8, № 7, # bio044529, p. 1-12, doi: 10.1242/bio.044529.
84. Andreeva N, Ledova L, Ryasanova L, Kulakovskaya T, Eldarov M.A. The acid phosphatase Pho5 of Saccharomyces cerevisiae is not involved in polyphosphate breakdown // Folia Microbiologica. 2019, v. 64, № 6, p. 867-873, doi: 10.1007/s12223-019-00702-6.
85. Andreeva Nadeshda, Larisa Ledova, Lubov Ryazanova, Alexander Tomashevsky, Tatiana Kulakovskaya, Mikhail Eldarov. Ppn2 endopolyphosphatase overexpressed in Saccharomyces cerevisiae: Comparison with Ppn1, Ppx1, and Ddp1 polyphosphatases // Biochimie. 2019, v. 163, p. 101-107, doi: 10.1016/j.biochi.2019.06.001.
86. Andrey Moiseenko, Natalia Loiko, Ksenia Tereshkina, Yana Danilova, Vladislav Kovalenko, Oleg Chertkov, Alexey V. Feofanov, Yurii F. Krupyanskii, Olga S. Sokolova. Projection structures reveal the position of the DNA within DNA-Dps Co-crystals // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2019, v. 517, № 3, p. 463-469, doi: 10.1016/j.bbrc.2019.07.103.
87. Anna S. Dotsenko, Subrata Pramanik, Alexander V. Gusakov, Aleksandra M. Rozhkova, Ivan N. Zorov, Arkady P. Sinitsyn, Mehdi D. Davari, Ulrich Schwaneberg. Critical effect of proline on thermostability of endoglucanase II from Penicillium verruculosum // Biochemical Engineering Journal. 2019, v. 152, # 107395, p. 1-9, doi: 10.1016/j.bej.2019.107395.
88. Atroshenko D. L., M. D. Shelomov, A. A. Zhgun, D.A. Avdanina, M. A. Eldarov, T. A. Chubar, S. S. Savin, V. I. Tishkov. Preparation and characterization of D-amino acid oxidases from yeast Ogateya parapolimorpha DL1 // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, S1, # P-41-063, p. 427-428, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
89. Babich T.L., Safonov A.V., Grouzdev D.S., Andryuschenko N.D., Zakharova E.V., Nazina T.N. Бактерии рода Shewanella из загрязненных радионуклидами подземных вод // Микробиология. 2019, т. 88, № 5, с. 583-595, doi: 10.1134/S0026365619040039.
90. Becheva Z.R., Gabrovska K.I., Godjevargova T.I., Zvereva E.A. Aflatoxin B1 determination in peanuts by magnetic nanoparticle-based immunofluorescence assay // Food Analytical Methods. 2019, v. 12, № 6, p. 1456-1465, doi: 10.1007/s12161-019-01480-0.
91. Berlina A.N., Komova N.S., Zherdev A.V., Gaur M.S., Dzantiev B.B. Colorimetric technique for antimony detection based on the use of gold nanoparticles conjugated with poly-A oligonucleotide // Applied Sciences (Switzerland). 2019, v. 9, № 22, # 4782, doi: 10.3390/app9224782.
92. Berlina A.N., Zherdev A.V., Pridvorova S.M., Gaur M.S., Dzantiev B.B. Rapid visual detection of lead and mercury via enhanced crosslinking aggregation of aptamer-labeled gold nanoparticles // Journal of Nanoscience and Nanotechnology. 2019, v. 19, № 9, p. 5489-5495, doi: 10.1166/jnn.2019.16575.
93. Bezsudnova E.Y., Boyko K.M., Nikolaeva A.Y., Zeifman Y.S., Rakitina T.V., Suplatov D.A., Popov V.O. Biochemical and structural insights into PLP fold type IV transaminase from Thermobaculum terrenum // Biochimie. 2019, v. 158, p. 130-138, doi: 10.1016/j.biochi.2018.12.017.
94. Bonartsev P., Bonartseva G.A., Reshetov I.V., Kirpichnikov M.P., Shaitan K.V. Применение полиоксиалканоатов в медицине и биологическая активность природного поли-3-оксибутирата // Acta Naturae. 2019, v. 11, № 2, p. 4-16.
95. Borrel V., Gannesen A. V., Barreau M., Gaviard C., Duclairoir‐Poc C., Hardouin J., Konto‐Ghiorghi Y., Lefeuvre L., Feuilloley M. G. Adaptation of acneic and non acneic strains of Cutibacterium acnes to sebum‐like environment // MicrobiologyOpen. 2019, v. 8, № 9, # e00841, doi: 10.1002/mbo3.841.
96. Boyko K.M., Baymukhametov T.N., Chesnokov Yu.M., Hons M., Lushchekina S.V., Konarev P.V., Lipokin A.V., Vasiliev A.L., Masson P., Popov V.O., Kovalchuk M.V. 3D structure of the natural tetrameric form of human butyrylcholinesterase as revealed by cryoEM, SAXS and MD // Biochimie. 2019, v. 156, # WOS:000453217300020, p. 196-205, doi: 10.1016/j.biochi.2018.10.017.
97. Bryantseva I.A., Tarasov A.L., Kostrikina N.A., Gaisin V.A., Grouzdev D.S., Gorlenko V.M. Prosthecochloris marina sp. nov., a new green sulfur bacterium from the coastal zone of the South China Sea // Archives of Microbiology. 2019, v. 201, № 10, p. 1399-1404, doi: 10.1007/s00203-019-01707-y.
98. Buglak A A, Telegina T.A. A theoretical study of 5,6,7,8-tetrahydro-6-hydroxymethylpterin: insight into intrinsic photoreceptor properties of 6-substituted tetrahydropterins // Photochemical & Photobiological Sciences. 2019, v. 18, № 2, p. 516-523, doi: 10.1039/c8pp00322j.
99. Buglak A.A, Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Nano-(Q)SAR for cytotoxicity prediction of engineered nanomaterials // Molecules. 2019, v. 24, № 24, # 4537, doi: 10.3390/molecules24244537.
100. Buglak A.A., Telegina T.A., Vorotelyak E.A., Kononov A.I. Theoretical study of photoreactions between oxidized pterins and molecular oxygen // Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry. 2019, v. 372, p. 254-259, doi: 10.1016/j.jphotochem.2018.12.002.
101. Buglak A.A., Zherdev A.V., Lei H.T., Dzantiev B.B. QSAR analysis of immune recognition for triazine herbicides based on immunoassay data for polyclonal and monoclonal antibodies // PLoS ONE. 2019, v. 14, № 4, # e0214879, doi: 10.1371/journal.pone.0214879.
102. Bukhtiyarova PA, Antsiferov DV, Brasseur G, Avakyan MR, Frank YA, Ikkert OP, Pimenov NV, Tuovinen OH, Karnachuk OV. Isolation, characterization, and genome insights into an anaerobic sulfidogenic Tissierella bacterium from Cu-bearing coins // Anaerobe. 2019, v. 56, p. 66-77, doi: 10.1016/j.anaerobe.2019.02.012.
103. Bulaev A. Two-stage leaching of substandard copper-zinc concentrate // Journal of Biotechnology. 2019, v. 305, S, # PP-APR11-023, p. 40-40, doi: 10.1016/j.jbiotec.2019.05.142.
104. Burganskaya E.I., Bryantseva I.A., Krutkina M.S., Grouzdev D.S., Gorlenko V.M. Bacterial communities of the microbial mats of Chokrak sulfide springs // Archives of Microbiology. 2019, v. 201, № 6, p. 795-805, doi: 10.1007/s00203-019-01648-6.
105. Byzova N.A., Vengerov Yu.Yu., Voloshchuk S.G., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Development of a lateral flow highway: Ultra-rapid multitracking immunosensor for cardiac markers // Sensors. 2019, v. 19, № 24, # 4594, doi: 10.3390/s19245494.
106. Chebotareva N.A., Eronina T.B., Roman S.G., Mikhaylova V.V., Sluchanko N.N., Gusev N.B., Kurganov B.I. Oligomeric state of αB-crystallin under crowded conditions // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2019, v. 508, № 4, p. 1101-1105, doi: 10.1016/j.bbrc.2018.12.015.
107. Costabile G., Buroni S., Provenzano R., Miro A., Azzalin A., Scoffone V., Chiarelli L., Makarov V., Brocca P., Riccardi G., Ungaro F. ELONGATED MUCUS -PENETRATING NANOCRYSTALS FOR LUNG DELIVERY OF A NEW ANTI-BURKHOLDERIA AGENT IN CYSTIC FIBROSIS // Journal of Aerosol Medicine and Pulmonary Drug Delivery. 2019, v. 32, № 3, p. 34-35, doi: 10.1089/jamp.2019.ab02.abstracts.
108. D.A. Gvozdev, А.А. Ramonova, Y.B. Slonimskiy, Е.G. Maksimov, М.М. Moisenovich, V.Z. Paschenko. Modification by transferrin increases the efficiency of delivery and the photodynamic effect of the quantum dot–phthalocyanine complex on A431 cells // Archives of Biochemistry and Biophysics. 2019, v. 678, # 108192, p. 1-9, doi: 10.1016/j.abb.2019.108192.
109. Danilevich V.N., Mulyukin A.L., Machulin A.V., Sorokin V.V., Kozlov S.A. Structural variability of DNA-containing Mg-pyrophosphate microparticles: optimized conditions to produce particles with desired size and morphology // Journal of Biomolecular Structure and Dynamics. 2019, p. 1-13, doi: 10.1080/07391102.2018.1442747.
110. Datskevich P., G. Kopylova, I. Safenkova, A. Matyushenko. Small heat shock proteins HspB1, HspB6 interact with contractile apparatus of striated muscle // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl.1, p. 193-194, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
111. Dergacheva D., Sekova V. The influence of the medium pH and hyprogen peroxide on the redox status of the Yarrowia lipolytica yeast // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, # Р-13-002, p. 171-172, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
112. Dudylina A.L., Ivanova M.V., Shumaev K.B., Ruuge E.K. Superoxide Formation in Cardiac Mitochondria and Effect of Phenolic Antioxidants // Cell Biochemistry and Biophysics. 2019, v. 77, № 1, p. 99-107, doi: 10.1007/s12013-018-0857-2.
113. Ekaterina S. Titova. Biofuel Application as a Factor of Sustainable Development Ensuring: The Case of Russia // Energies. 2019, v. 12, № 20, # 3948, doi: 10.3390/en12203948.
114. Elisavet A.Renieri, Irina V. Safenkova, Athanasios Κ. Alegakis, Elvira S. Slutskaya, Venetia Kokaraki, Maroudio Kentouri, Boris B. Dzantiev, Aristidis M. Tsatsakis. Cadmium, lead and mercury in muscle tissue of gilthead seabream and seabass: Risk evaluation for consumers // Food and Chemical Toxicology. 2019, v. 124, p. 439-449, doi: 10.1016/j.fct.2018.12.020.
115. Eronina T.B., V.V. Mikhaylova, N.A. Chebotareva, V.V. Shubin, N.N. Sluchanko, B.I. Kurganov. Comparative effects of trehalose and 2-hydroxypropyl-β-cyclodextrin on aggregation of UV-irradiated muscle glycogen phosphorylase b // Biochimie. 2019, v. 165, p. 196-205, doi: 10.1016/j.biochi.2019.08.006.
116. Ershov NI, Mordvinov VA, Prokhortchouk EB, Pakharukova MY, Gunbin KV, Ustyantsev K, Genaev MA, Blinov AG, Mazur A, Boulygina E, Tsygankova S, Khrameeva E, Chekanov N, Fan G, Xiao A, Zhang H, Xu X, Yang H, Solovyev V, Lee SM, Liu X, Afonnikov DA, Skryabin KG. New insights from Opisthorchis felineus genome: update on genomics of the epidemiologically important liver flukes. // BMC Genomics. 2019, v. 20, № 1, # 399, doi: 10.1186/s12864-019-5752-8.
117. Filyushin M.A., Beletsky A.V., Kochieva E.Z. Characterization of the complete chloroplast genome of leek Allium porrum L. (Amaryllidaceae) // Mitochondrial DNA Part B: Resources. 2019, v. 4, № 2, p. 2602-2603, doi: 10.1080/23802359.2019.1640090.
118. Fomchenko Natalya, Muravyov Maxim. Effect of sulfide mineral content in copper-zinc concentrates on the rate of leaching of non-ferrous metals by biogenic ferric iron // Hydrometallurgy. 2019, v. 185, p. 82-87, doi: 10.1016/j.hydromet.2019.02.002.
119. Fomchenko Natalya, Taisiia Uvarova, Maxim Muravyov. Effect of mineral composition of sulfidic polymetallic concentrates on nonferrous metals bioleaching // Minerals Engineering. 2019, v. 138, p. 1-6, doi: 10.1016/j.mineng.2019.04.026.
120. Gaisin V.A., Burganskaya E.I., Grouzdev D.S., Ashikhmin A.A., Kostrikina N.A., Bryantseva I.A., Koziaeva V.V., Gorlenko V.M. ‘Candidatus Viridilinea mediisalina’, a novel phototrophic Chloroflexi bacterium from a Siberian soda lake // FEMS Microbiology Letters. 2019, v. 366, № 5, # fnz043, doi: 10.1093/femsle/fnz043.
121. Gaisin V.A., Burganskaya E.I., Grouzdev D.S., Osipova N.S., Ashikhmin A.A., Sinetova M.A., Krutkina M.S., Bryantseva I.A., Sukhacheva M.V., Kochetkova T.V., Koziaeva V.V., Kalashnikov A.M., Gorlenko V.M. ‘Candidatus Oscillochloris fontis’: a novel mesophilic phototrophic Chloroflexota bacterium belonging to the ubiquitous Oscillochloris genus. // FEMS Microbiology Letters. 2019, v. 366, № 8, # fnz097, p. 1-8, doi: 10.1093/femsle/fnz097.
122. Gannesen AV, Borrel V, Lefeuvre L, Netrusov AI, Plakunov VK, Feuilloley MGJ. Effect of two cosmetic compounds on the growth, biofilm formation activity, and surface properties of acneic strains of Cutibacterium acnes and Staphylococcus aureus // MicrobiologyOpen. 2019, v. 8, № 3, # e659, p. 1-12, doi: 10.1002/mbo3.659.
123. Goleva T.N., A.G. Rogov, G.A. Korshunova, T.A. Trendeleva, D.V. Mamaev, D.A. Aliverdieva, R.A. Zvyagilskaya. SkQThy, a novel and promising mitochondria-targeted antioxidant // Mitochondrion. 2019, v. 49, p. 206-216, doi: 10.1016/j.mito.2019.09.001.
124. Golomidova AK, Kulikov EE, Babenko VV, Ivanov PA, Prokhorov NS, Letarov AV. Escherichia coli bacteriophage Gostya9, representing a new species within the genus T5virus. // Archives of Virology. 2019, v. 164, № 3, p. 879-884, doi: 10.1007/s00705-018-4113-2.
125. Golomidova AK, Naumenko OI, Senchenkova SN, Knirel YA, Letarov AV. The O-polysaccharide of Escherichia coli F5, which is structurally related to that of E. coli O28ab, provides cells only weak protection against bacteriophage attack // Archives of Virology. 2019, v. 164, № 11, p. 2783-2787, doi: 10.1007/s00705-019-04371-1.
126. Golyshina OV, Bargiela R, Toshchakov SV, Chernyh NA, Ramayah S, Korzhenkov AA, Kublanov IV, Golyshin PN. Diversity of “Ca. Micrarchaeota” in Two Distinct Types of Acidic Environments and Their Associations with Thermoplasmatales // Genes. 2019, v. 10, № 6, # E461, doi: 10.3390/genes10060461.
127. Grigorov A, Salina E, Skvortsova Y, Bychenko O, Kaprelyants A, Azhikina T. DrrS and Mcr11, small RNAs of Mycobacterium tuberculosis, are involved in bacterial adaptation to persistence in the host organism // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, S1, # P-26-009, p. 246-246, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
128. Gruzdev E.V, Kadnikov V.V, Beletsky A.V, Mardanov A.V, Ravin N.V. Extensive plastome reduction and loss of photosynthesis genes in Diphelypaea coccinea, a holoparasitic plant of the family Orobanchaceae // PeerJ. 2019, v. 7, # e7830, doi: 10.7717/peerj.7830.
129. Gureeva M.V., Belousova E.V., Dubinina G.A., Novikov A.A., Kopitsyn D.S., Grabovich M.Y. Thioflexithrix psekupsensis gen. nov., sp. nov., a filamentous gliding sulfur bacterium from the family Beggiatoaceae // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 3, p. 798-804, doi: 10.1099/ijsem.0.003240.
130. Hendrickson O.D., Nikitushkin V.D., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Lectin-based detection of Escherichia coli and Staphylococcus aureus by flow cytometry // Archives of Microbiology. 2019, v. 201, № 3, p. 313-324, doi: 10.1007/s00203-018-1613-0.
131. Hendrickson O.D., Zvereva E.A., Shanin I.A., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Development of a multicomponent immunochromatographic test system for the determination of fluoroquinolone and amphenicol antibiotics in dairy products // Journal of the Science of Food and Agriculture. 2019, v. 99, № 8, p. 3834-3842, doi: 10.1002/jsfa.9605.
132. Irina F. Puntus, Oksana V. Borzova, Tatyana V. Funtikova, Nataliya E. Suzina, Nataliya S. Egozarian, Valentina N. Polyvtseva, Ekaterina S. Shumkova, Lenar I. Akhmetov, Ludmila A. Golovleva, Inna P. Solyanikova. Contribution of soil bacteria isolated from different regions into crude oil and oil product degradation // Journal of Soils and Sediments. 2019, v. 19, № 8, p. 3166-3177, doi: 10.1007/s11368-018-2003-6.
133. Ivanov A.V., Safenkova I.V., Razo S.C., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Development of enhanced lateral flow assay for potato virus X based on recombinase polymerase amplification // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, S1, p. 384-385, doi: 10.1002/2211-5463.12672.
134. K. Chekanov, E. Schastnaya, K. Neverov, S. Leu, S. Boussiba, A. Zarka, A. Solovchenko. Non-photochemical quenching in the cells of the carotenogenic chlorophyte Haematococcus lacustris under favorable condition and under stress // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)/General Subjects. 2019, v. 1863, № 10, p. 1429-1442, doi: 10.1016/j.bbagen.2019.05.002.
135. Kadnikov V, Mardanov A, Beletsky A, Karnachuk O, Ravin N. Genome of the candidate phylum Aminicenantes bacterium from a deep subsurface thermal aquifer revealed its fermentative saccharolytic lifestyle // Extremophiles. 2019, v. 23, № 2, p. 189-200, doi: 10.1007/s00792-018-01073-5.
136. Kadnikov V, Mardanov A, Beletsky A, Rakitin A, Frank Y, Karnachuk O, Ravin N. Phylogeny and physiology of candidate phylum BRC1 inferred from the first complete metagenome-assembled genome obtained from deep subsurface aquifer // Systematic and Applied Microbiology. 2019, v. 42, № 1, p. 67-76, doi: 10.1016/j.syapm.2018.08.013.
137. Kadnikov V.V, Savvichev A.S., Mardanov A.V., Beletsky A.V., Merkel A.Y., Ravin N.V., Pimenov N.V. Microbial communities involved in the methane cycle in the near-bottom water layer and sediments of the meromictic subarctic Lake Svetloe // Antonie van Leeuwenhoek International Journal of General and Molecular Microbiology. 2019, v. 112, № 12, p. 1801-1814, doi: 10.1007/s10482-019-01308-1.
138. Kalenkov GS, SG Kalenkov, IG Meerovich, AE Shtanko, NYu Zaalishvili. Hyperspectral holographic microscopy of bio-objects based on a modified Linnik interferometer // Laser Physics. 2019, v. 29, № 1 016201, p. 1-4, doi: 10.1088/1555-6611/aaf228.
139. Kallistova A, Kadnikov V, Rusanov I, Kokryatskaya N, Beletsky A, Mardanov A, Savvichev A, Ravin N, Pimenov N. Microbial communities involved in aerobic and anaerobic methane cycling in a meromictic ferruginous subarctic lake // Aquatic Microbial Ecology. 2019, v. 82, № 1, p. 1-18, doi: 10.3354/ame01878.
140. Kaparullina EN, Chemodurova AA, Agafonova NV, Karataeva TA, Detkova EN, Trotsenko YA, Doronina NV. Methylopila carotae sp. nov., a facultative methylotroph, isolated from a root of Daucus carota L. // Antonie van Leeuwenhoek International Journal of General and Molecular Microbiology. 2019, v. 112, № 9, p. 1 307-1 316, doi: 10.1007/s10482-019-01263-x.
141. Kaplun D., Prokhortchouk E., Zhenilo S. The role of the methylDNA binding protein in establishment of epigenetic landscape in mammalian cells // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, # P-22-004, p. 220-220, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
142. Kaplun D.S., Fok R.E., Korostina V.S., Prokhortchouk E.B., Zhenilo S.V. Kaiso Gene Knockout Promotes Somatic Cell Reprogramming // Biochemistry (Moscow). 2019, v. 84, № 3, # 10.1134/S0006297919030106, p. 283-290, doi: 10.1134/S0006297919030106.
143. Kapusta Dmitry P., Firsov Denis A., Khrenova Maria G., Grigorenko Bella L., Nemukhin Alexander V. Effect of solvation water shells on enzyme active sites in zinc-dependent hydrolases // Structural Chemistry. 2019, v. 30, № 2, p. 481-488, doi: 10.1007/s11224-018-1206-1.
144. Karpov D., M. Kotlov, D. Armyaninova, V. Tutyaeva, D. Spasskaya, V. Karpov. Efficient genome editing of the nonconventional yeast Debaryomyces hansenii // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, # P-38-013, p. 400-400, doi: 0.1002/2211-5463.12675.
145. Khlupova M., Morozova O., Shumakovich G., Vasil’eva I., Zaitseva E., Yaropolov A. One-pot catalytic synthesis of aniline-copolymer-containing reactive aldehyde groups using a laccase-mediator system // ChemistrySelect. 2019, v. 4, p. 10517-10519, doi: 10.1002/slct.201902403.
146. Khrenova M.G., Nemukhin A.V., Tsirelson V.G. Origin of the pi-stacking induced shifts in absorption spectral bands of the green fluorescent protein chromophore // Chemical Physics. 2019, v. 522, p. 32-38, doi: 10.1016/j.chemphys.2019.02.010.
147. Khrenova M.G., Tsirelson V.G. The NH hydrogen bond strength in the transition state at the limiting step determines the reactivity of cephalosporins in the active site of L1 metallo-b-lactamase // Mendeleev Communications. 2019, v. 29, № 5, p. 492-494, doi: 10.1016/j.mencom.2019.09.004.
148. Khrenova, M.G., Krevitskaya A.V., Tsirelson V.G. The QM/MM-QTAIM approach reveals the nature of different reactivity of cephalosporins in the active site of L1 metallo-beta-lactamase // New Journal of Chemistry. 2019, v. 43, № 19, p. 7329-7338, doi: 10.1039/c9nj00254e.
149. Kopylova G., V. Berg, S. Bershitsky, A. Matyushenko, D. Shchepkin. The effects of cardiomyopathy-associated mutations in the head-to-tail overlap junction of α-tropomyosin on the calcium regulation of the actin-myosin interaction // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl.1, # P-03-025, p. 111-111, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
150. Kopylova G.V., A.M. Matyushenko, V.Y. Berg, S.R. Nabiev, L.V. Nikitina, D.I. Levitsky, D.V. Shchepkin, S.Y. Bershitsky. Changes in alpha-tropomyosin induced by posttranslational modifications and their effect on the actin-myosin interaction in the myocardium // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2019, v. 40, p. 244-244, doi: 10.1007/s10974-019-09534-w.
151. Kopylova Galina V., Daniil V. Shchepkin, Salavat R. Nabiev, Alexander M. Matyushenko, Natalia A. Koubassova, Dmitrii I. Levitsky, Sergey Y. Bershitsky. Cardiomyopathy‑associated mutations in tropomyosin differently affect actin–myosin interaction at single‑molecule and ensemble levels // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2019, v. 40, № 3-4, p. 299-308, doi: 10.1007/s10974-019-09560-8.
152. Kosmachevskaya O.V., Shumaev K.B., Topunov A.F. Electrophilic signaling: the role of reactive carbonyl compounds // Biochemistry (Moscow). 2019, v. 84, Suppl.1, p. 206-224, doi: 10.1134/S0006297919140128.
153. Kots Ekaterina D., Khrenova Maria G., Nemukhin Alexander V. Allosteric Control of N-Acetyl-Aspartate Hydrolysis by the Y231C and F295S Mutants of Human Aspartoacylase // Journal of Chemical Information and Modeling. 2019, v. 59, № 5, p. 2299-2308, doi: 10.1021/acs.jcim.8b00666.
154. Kovalenko V., N. Loiko, E. Tereshkin, K. Tereshkina, A. Chulichkov, A. Popov, Y. Krupyanskii. Solving the structure of Dps protein by multiple-crystal macromolecular crystallography methods // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, S1, p. 261-262, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
155. Kovaleva OL, Elcheninov AG, Toshchakov SV, Novikov AA, Bonch-Osmolovskaya EA, Kublanov IV. Tautonia sociabilis gen. nov., sp. nov., a novel thermotolerant planctomycete, isolated from a 4000 m deep subterranean habitat // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 8, p. 2299-2304, doi: 10.1099/ijsem.0.003467.
156. Koziaeva V.V., Rusakova S.A., Slobodova N.V., Uzun M., Kolganova T.V., Skryabin K.G., Grouzdev D.S. Magnetospirillum kuznetsovii sp. nov., a novel magnetotactic bacterium isolated from a lake in the Moscow region // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 7, p. 1953-1959, doi: 10.1099/ijsem.0.003408.
157. Kozlova MV, Ianutsevich EA, Danilova OA, Kamzolkina, OV, Tereshina, VM. Lipids and soluble carbohydrates in the mycelium and ascomata of alkaliphilic fungus Sodiomyces alkalinus // Extremophiles. 2019, v. 23, № 4, p. 487-494, doi: 10.1007/s00792-019-01100-z.
158. Kravchenko Irina K., Tikhonova Ekaterina N., Ulanova Ruzalia V., Menko Ekaterina V., Sukhacheva Marina V. Effect of temperature on litter decomposition, soil microbial community structure and biomass in a mixed-wood forest in European Russia // Current Science (India). 2019, v. 16, № 5, p. 765-772, doi: 10.18520/cs/v116/i5/765-772.
159. Kudryavtseva E., Aleksandrov S., Bukanova T., Dmitrieva O., Rusanov I. Relationship between seasonal variations of primary production, abiotic factors and phytoplankton composition in the coastal zone of the south-eastern part of the Baltic Sea // Regional Studies in Marine Science. 2019, v. 32, # 100862, p. 2352-2355, doi: 10.1016/j.rsma.2019.100862.
160. Kushnirov V. V. Michael Ter-Avanesyan (1949-2018)-life in science // Prion. 2019, v. 13, № 1, p. 37-40, doi: 10.1080/19336896.2019.1567201.
161. Kushwah M., Gaur M.S., Arora K., Berlina A. Bio synthesis of colloidal AuNPs using thermally assisted pulse sonication method // Materials Research Express. 2019, v. 6, № 11, # 115068, doi: 10.1088/2053-1591/ab4a69.
162. Kushwah M., Gaur M.S., Berlina A.N., Arora K. Biosynthesis of novel Ag@Cu alloy NPs for enhancement of methylene blue photocatalytic activity and antibacterial activity // Materials Research Express. 2019, v. 6, № 11, # 116561, doi: 10.1088/2053-1591/ab485e.
163. Levina Elena O., Ivan Y. Chernyshov, Alexander P. Voronin, Leonid N. Alekseiko, Adam I. Stash, Mikhail V. Vener. Solving the enigma of weak fluorine contacts in the solid state: a periodic DFT study of fluorinated organic crystals // RSC Advances. 2019, v. 9, № 22, # 10.1039/C9RA02116G, p. 12520-12537, doi: 10.1039/C9RA02116G.
164. Liew P.S, Chen Q, Ng A.W.R, Chew Y.C, Ravin N.V, Sim E.U.H, Lee C.W, Narayanan K. Phage N15 protelomerase resolves its tos recognition site into hairpin telomeres within mammalian cells // Analytical Biochemistry. 2019, v. 583, # 113361, doi: 10.1016/j.ab.2019.113361.
165. Litti Y.V., Nikitina A., Kovalev D. A., Ermoshin A.A., Mahajan R., Goel G., Nozhevnikova A.N. Influence of cationic polyacrilamide flocculant on high-solids’ anaerobic digestion of sewage sludge under thermophilic conditions // Environmental Technology. 2019, v. 40, № 9, p. 1146-1152, doi: 10.1080/09593330.2017.1417492.
166. Lokshina L., Vavilin V., Litti Y., Glagolev M., Sabrekov A., Kotsyurbenko O., Kozlova M. Methane Production in a West Siberian Eutrophic Fen Is Much Higher than Carbon Dioxide Production: Incubation of Peat Samples, Stoichiometry, Stable Isotope Dynamics, Modeling // Water Resources. 2019, v. 46, S1, p. 110-125, doi: 10.1134/S0097807819070133.
167. Mahajan R., A. Nikitina, Y. Litti, A. Kallistova, A. Nozhevnikova, G. Goel. Evaluating anaerobic and aerobic digestion strategies for degradation of pretreated pine needle litter // International Journal of Environmental Science and Technology. 2019, v. 16, № 1, p. 191-200, doi: 10.1007/s13762-017-1601-y.
168. Maksimov Eugene G., Wen-Jun Li, Elena A. Protasova, Thomas Friedrich, Baosheng Ge, Song Qin, Nikolai N. Sluchanko. Hybrid coupling of R-phycoerythrin and the orange carotenoid protein supports the FRET-based mechanism of cyanobacterial photoprotection // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2019, v. 516, № 3, p. 699-704, doi: 10.1016/j.bbrc.2019.06.098.
169. Marchenko M., V. Nefedova, D. Shchepkin, A. Matyushenko. Structural and functional properties of neuronal tropomyosin isoforms // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl.1, p. 192-193, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
170. Margarita V. Semenova, Alexander V. Gusakov, Pavel V. Volkov, Veronika Yu. Matys, Vitaly A. Nemashkalov, Vadim D. Telitsin, Alexandra M. Rozhkova, Arkady P. Sinitsyn. Enhancement of the enzymatic cellulose saccharification by Penicillium verruculosum multienzyme cocktails containing homologously overexpressed lytic polysaccharide monooxygenase // Molecular Biology Reports. 2019, v. 46, № 2, p. 2363-2370, doi: 10.1007/s11033-019-04693-y.
171. Maria A. Slugina, Anna V. Shchennikova, Elena Z. Kochieva. Differences in the sucrose synthase gene SUS1 expression pattern between Solanum lycopersicum and wild tomato species // Theoretical and Experimental Plant Physiology. 2019, v. 31, № 4, p. 455-462, doi: 10.1007/s40626-019-00158-6.
172. Maria A. Slugina, Anna V. Shchennikova, Elena Z. Kochieva. The expression pattern of the Pho1a genes encoding plastidic starch phosphorylase correlates with the degradation of starch during fruit ripening in green-fruited and red-fruited tomato species // Functional Plant Biology. 2019, v. 46, № 12, p. 1146-1157, doi: 10.1071/FP18317.
173. Matyushenko A.M., D.V. Shchepkin, G.V. Kopylova, S.Y. Kleymenov, S.Y. Bershitsky, D.I. Levitsky. Effects of myopathy-causing mutations M9R, E151A and K169E in TPM3 gene on structural and functional properties of slow skeletal muscle tropomyosin // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2019, v. 40, p. 258-258, doi: 10.1007/s10974-019-09534-w.
174. Matyushenko A.M., Shchepkin D.V., Susorov D.S., Nefedova V.V., Kopylova G.V., Berg V.Y., Kleymenov S.Y., Levitsky D.I. Structural and functional properties of αβ-heterodimers of tropomyosin with myopathic mutations Q147P and K49del in the β-chain // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2019, v. 508, № 3, p. 934-939, doi: 10.1016/j.bbrc.2018.12.019.
175. Matyushenko A.M., V.V. Nefedova, L.V. Nikitina, S.R. Nabiev, V.Y. Berg, G.V. Kopylova, D.V. Shchepkin. Structural and functional properties of k-TPM // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2019, v. 40, p. 267-267, doi: 10.1007/s10974-019-09534-w.
176. Meteleshko Yulia I., Nemukhin Alexander, Khrenova Maria. Novel flavin-based fluorescent proteins with red-shifted emission bands: a computational study // Photochemical & Photobiological Sciences. 2019, v. 18, № 1, p. 177-189, doi: 10.1039/c8pp00361k.
177. Muravyov M. Bioprocessing of mine waste: effects of process conditions // Chemical Papers. 2019, v. 73, № 12, p. 3 075-3 083, doi: 10.1007/s11696-019-00844-4.
178. Muravyov M. Two-step processing of refractory gold-containing sulfidic concentrate via biooxidation at two temperatures // Chemical Papers. 2019, v. 73, № 1, p. 173-183, doi: 10.1007/s11696-018-0562-z.
179. Muravyov M. Zinc leaching from sulfidic concentrate in two-step biohydrometallurgical process // Journal of Biotechnology. 2019, v. 305, S, # PP-APR12-002, p. 51-51, doi: 10.1016/j.jbiotec.2019.05.180.
180. Nadolinskaia N., D. Karpov, D. Armianinova, M. Shumkov, A. Goncharenko. Synthetical CRISPR array with dual gRNAs for efficient knockout of mycobacterial genes // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, # P-38-015, p. 401-401, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
181. Nefedova V.V., M.A. Marchenko, D.V. Shchepkin, G.V. Kopylova, S.R. Nabiev, S.Y. Bershitsky, A.M. Matyushenko, D.I. Levitsky. Functional role of core gaps in tropomyosin structure // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2019, v. 40, p. 261-261, doi: 10.1007/s10974-019-09534-w.
182. Nefedova V.V., Marchenko M.A., Kleymenov S.Y., Datskevich P.N., Levitsky D.I., Matyushenko A.M. Thermal unfolding of various human non-muscle isoforms of tropomyosin // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2019, v. 514, № 3, p. 613-617, doi: 10.1016/j.bbrc.2019.05.008.
183. Nemukhin Alexander V., Grigorenko Bella L., Khrenova M.G., Krylov A.I. Computational Challenges in Modeling of Representative Bioimaging Proteins: GFP-Like Proteins, Flavoproteins, and Phytochromes // Journal of Physical Chemistry B: Biophysical Chemistry, Biomaterials, Liquids, and Soft Matter. 2019, v. 123, № 29, p. 6133-6149, doi: 10.1021/acs.jpcb.9b00591.
184. Nikitina L.V., S.R. Nabiev, A.M. Matyushenko, S.Y. Bershitsky. Effect of tropomyosin phosphorylation on the bending stiffness of thin filament with cardiomyopathy associated tropomyosin mutants // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2019, v. 40, p. 261-262, doi: 10.1007/s10974-019-09534-w.
185. Novikova N.N., Kovalchuk M.V., Yurieva E.A., Konovalov O.V., Stepina N.D., Rogachev A.V., Yalovega G.E., Kosmachevskaya O.V., Topunov A.F., Yakunin S.N. The enhancement of metal-binding properties in hemoglobin: the role of mild damaging factors // Journal of Physical Chemistry B: Biophysical Chemistry, Biomaterials, Liquids, and Soft Matter. 2019, v. 123, № 40, p. 8370-8377, doi: 10.1021/acs.jpcb.9b06571.
186. Nunvar J., Hogan A., Buroni S., Savina S., Makarov V., Cardona S., Drevinek P. The effect of 2-thiocyanatopyridine derivative 11026103 on Burkholderia cenocepacia: resistance mechanisms and systemic impact // Antibiotics. 2019, v. 8, № 4, # 159, doi: 10.3390/antibiotics8040159.
187. Nuraeva Gulgina, Zhgun Alexander. Polyamines as mediators of secondary metabolite production in filamentous fungi // International journal of molecular medicine. 2019, v. 44, S1, # 214, p. 33-33.
188. Orlova NA, Kovnir SV, Khodak YA, Polzikov MA, Nikitina VA, Skryabin KG, Vorobiev II. High-level expression of biologically active human follicle stimulating hormone in the Chinese hamster ovary cell line by a pair of tricistronic and monocistronic vectors // PLoS ONE. 2019, v. 14, № 7, # e0219434, p. 1-20, doi: 10.1371/journal.pone.0219434.
189. Oshkin IY, Kulichevskaya IS, Rijpstra WIC, Sinninghe Damsté JS, Rakitin AL, Ravin NV, Dedysh SN. Granulicella sibirica sp. nov., a psychrotolerant acidobacterium isolated from an organic soil layer in forested tundra, West Siberia // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 4, p. 1195-1201, doi: 10.1099/ijsem.0.003290.
190. Panova Tatiana V., Stepan N. Kostenko, Anna A. Efimova, Evgeniy G. Evtushenko, Felix Plamper, Walter Richtering, Alexander I. Yaropolov, Alexander A. Yaroslavov. Electrostatic complexes between thermosensitive cationic microgels and anionic liposomes: Formation and triggered release of encapsulated enzyme // European Polymer Journal. 2019, v. 119, p. 222-228, doi: 10.1016/j.eurpolymj.2019.07.037.
191. Petrakova A.V., Urusov A.E., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Gold nanoparticles of different shape for bicolor lateral flow test // Analytical Biochemistry. 2019, v. 568, p. 7-13, doi: 10.1016/j.ab.2018.12.015.
192. Pishchalnikov R., Shubin V., Razjivin A. Single Molecule Fluorescence Spectroscopy of PSI Trimers from Arthrospira platensis: A Computational Approach // Molecules. 2019, v. 24, № 4, # E822, p. 1-20, doi: 10.3390/molecules24040822.
193. Pishchalnikov RY, Yaroshevich IA, Slastnikova TA, Ashikhmin AA, Stepanov AV, Slutskaya EA, Friedrich T, Sluchanko NN, Maksimov EG. Structural peculiarities of keto-carotenoids in water-soluble proteins revealed by simulation of linear absorption // Physical Chemistry Chemical Physics. 2019, v. 21, № 46, p. 25 707-25 719, doi: 10.1039/c9cp04508b.
194. Podosokorskaya OA, Teplyuk AV, Zayulina KS, Kopitsyn DS, Dominova IN, Elcheninov AG, Toshchakov SV, Kublanov IV. The metabolism of thermophilic hydrolytic bacterium Thauera hydrothermalis strain par-f-2 isolated from the West Siberian subsurface biosphere. // Microbiology (Mikrobiologiya). 2019, v. 88, № 5, p. 556-562.
195. Polyakov KM, Gavryushov S, Fedorova TV, Glazunova OA, Popov AN. The subatomic resolution study of laccase inhibition by chloride and fluoride anions using single-crystal serial crystallography: insights into the enzymatic reaction mechanism // Acta Crystallographica Section D: Structural Biology. 2019, v. 75, p. 804-816, doi: 10.1107/S2059798319010684.
196. Porotikova E., Dmitrenko U., Yurchenko E, Vinogradova S. First Report of Grapevine leafroll-associated virus 2 in Russian Grapevines (Vitis vinifera) // Plant Disease. 2019, v. 103, № 1, p. 164-164, doi: 10.1094/PDIS-05-18-0749-PDN.
197. Prokhortchouk E, Skryabin KG, Laskar RS, Muller DC, Li P, Machiela MJ, Ye Y, Gaborieau V, Foll M, Hofmann JN, Colli L, Sampson JN, Wang Z, Bacq-Daian D, Boland A, Abedi-Ardekani B, Durand G, Le Calvez-Kelm F, Robinot N, Blanche H, Burdett L, Yeager M, Radojevic-Skodric S, Savic S, Foretova L, Holcatova I, Janout V, Mates D, Rascu S, Mukeria A, Zaridze D, Bencko V, Cybulski C, Fabianova E, Jinga V, Lissowska J, Lubinski J, Navratilova M, Rudnai P, Świątkowska B, Benhamou S, Cancel-Tassin G, Cussenot O, Trichopoulou A, Riboli E, Overvad K, Panico S, Ljungberg B, Sitaram RT, Giles GG, Milne RL, Severi G, Bruinsma F, Fletcher T, Koppova K, Larsson SC, Wolk A, Banks RE, Selby PJ, Easton DF, Pharoah P, Andreotti G, Beane Freeman LE, Koutros S, Albanes D, Männistö S, Weinstein S, Clark PE, Edwards TL, Lipworth L, Carol H, Freedman ML, Pomerantz MM, Cho E, Kraft P, Preston MA, Wilson KM, Michael Gaziano J, Sesso HD, Black A, Freedman ND, Huang WY, Anema JG, Kahnoski RJ, Lane BR, Noyes SL, Petillo D, Teh BT, Peters U, White E, Anderson GL, Johnson L, Luo J, Chow WH, Moore LE, Choueiri TK, Wood C, Johansson M, McKay JD, Brown KM, Rothman N, Lathrop MG, Deleuze JF, Wu X, Brennan P, Chanock SJ, Purdue MP, Scelo G. Sex specific associations in genome wide association analysis of renal cell carcinoma. // European Journal of Human Genetics. 2019, p. 1589-1598, doi: 10.1038/s41431-019-0455-9.
198. Rabinovich ML, Melnik MS, Herner ML, Voznyi YV, Vasilchenko LG. Predominant Nonproductive Substrate Binding by Fungal Cellobiohydrolase I and Implications for Activity Improvement // Biotechnology Journal. 2019, v. 14, № 3, # 1700712, doi: 10.1002/biot.201700712.
199. Razo S.C., Panferova N.A., Panferov V.G., Safenkova I.V., Drenova N.V., Varitsev Y.A., Zherdev A.V., Pakina E.N., Dzantiev B.B. Enlargement of gold nanoparticles for sensitive immunochromatographic diagnostics of potato brown rot // Sensors. 2019, v. 19, № 1, # 153, doi: 10.3390/s19010153.
200. Rovnyagina Nataliya R, Tatiana N Tikhonova, Victor O Kompanets, Nikolai N Sluchanko, Kristina V Tugaeva, Sergey V Chekalin, Victor V Fadeev, Juergen Lademann, Maxim E Darvin, Evgeny A Shirshin. Free and bound Thioflavin T molecules with ultrafast relaxation: implications for assessment of protein binding and aggregation // Laser Physics Letters. 2019, v. 16, № 7, p. 1-7, doi: 10.1088/1612-202X/ab2244.
201. S.N. Parshina, Nikolaos Strepis, Steven Aalvink, Alla N. Nozhevnikova, Alfons J. M. Stams, Diana Z. Sousa. Trichococcus scherbakoviae sp. nov., isolated from a laboratory-scale anaerobic EGSB bioreactor operated at low temperature // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 2, p. 529-534, doi: 10.1099/ijsem.0.003193.
202. Salina E.G., Ekins S., Makarov V.A. A Rapid Method for Estimation of the Efficacy of Potential Antimicrobials in Humans and Animals by Agar Diffusion Assay // Chemical Biology and Drug Design. 2019, v. 93, № 6 SI, p. 1021-1025, doi: 10.1111/cbdd.13427.
203. Salina EG, Grigorov AS, Bychenko OS, Skvortsova YV, Mamedov IZ, Azhikina TL, Kaprelyants AS. Resuscitation of Dormant “Non-culturable” Mycobacterium tuberculosis Is Characterized by Immediate Transcriptional Burst // Frontiers in cellular and infection microbiology. 2019, v. 9, # 272, doi: 10.3389/fcimb.2019.00272.
204. Salina EG, Grigorov AS, Skvortsova YV, Majorov KB, Bychenko OS, Ostrik AA, Logunova NN, Ignatov DV, Kaprelyants AS, Apt AS, Azhikina TL. MTS1338, a small Mycobacterium tuberculosis RNA, regulates transcriptional shifts consistent with bacterial adaptation for entering into dormancy and survival within host macrophages // Frontiers in cellular and infection microbiology. 2019, v. 9, # 405, p. 1-11, doi: 10.3389/fcimb.2019.00405.
205. Samokhvalov A.V., Safenkova I.V., Eremin S.A., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Fluorescent polarization aptamer assay for ochratoxin A with gold nanoparticles as enhancing anchors // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, S1, # P-36-050, p. 386-386, doi: 10.1002/2211-5463.12672.
206. Samylina O.S., Zaytseva L.V. Characterization of modern dolomite stromatolites from hypersaline Petukhovskoe Soda lake, Russia // Lethaia. 2019, v. 52, doi: 10.1111/let.12286.
207. Schmalhausen E.V., M.S. Shumkov, V.I. Muronetz, V.K. Švedas. Expression of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase from M. tuberculosis in E. coli. Purification and characteristics of the untagged recombinant enzyme // Protein Expression and Purification. 2019, v. 157, p. 28-35, doi: 10.1016/j.pep.2019.01.010.
208. Sekova V., Dergacheva D. The proteome of Yarrowia lipolytica yeast during adaptation to a combined (cross) pH and heat stress // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, # Р-07-002, p. 135-135, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
209. Semenova E.M., Sokolova D.S., Grouzdev D.S., Poltaraus A.B., Vinokurova N.G., Tourova T.P., Nazina T.N. Geobacillus proteiniphilus sp. nov., a thermophilic bacterium isolated from a high-temperature heavy oil reservoir in China // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 10, p. 3001-3008, doi: 10.1099/ijsem.0.003486.
210. Sergey V. Rykov, Petra Kornberger, Jonathan Heerlet, Nikita V.Tsurin, Ivan N. Zorov, Vladimir V. Zverlov, Wolfgang Liebl, Wolfgang H. Schwarz, Sergey V. Yarotsky, Oksana V. Berezina. Novel endo-(1,4)-β-glucanase Bgh12A and xyloglucanase Xgh12B from Aspergillus cervinus belong to GH12 subgroup I and II, respectively // Applied Microbiology and Biotechnology. 2019, v. 103, № 18, p. 7553-7566.
211. Sharko F.S., Boulygina E.S., Rastorguev S.M., Tsygankova S.V., Tomkovich P.S., Nedoluzhko A.V. Phylogenetic position of the presumably extinct slender-billed curlew, Numenius tenuirostris // Mitochondrial DNA Part A: DNA Mapping, Sequencing, and Analysis. 2019, v. 30, № 4, p. 626-631, doi: 10.1080/24701394.2019.1597862.
212. Sharko F.S., Rastorguev S.M., Boulygina E.S., Tsygankova S.V., Ibragimova A.S., Tikhonov A.N., Nedoluzhko A.V. Molecular phylogeny of the extinct Steller’s sea cow and other Sirenia species based on their complete mitochondrial genomes // Genomics. 2019, v. 111, № 6, # S0888-7543(18)30475-0, p. 1543-1546, doi: 10.1016/j.ygeno.2018.10.012.
213. Shchepkin D.V., Matyushenko A.M., Bershitsky S.Y., Kopylova G.V. Effect of Interchain Disulfide Crosslinking in the Tropomyosin Molecule on Actin-Myosin Interaction in the Atrial Myocardium // Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2019, v. 167, № 1, p. 65-68, doi: 10.1007/s10517-019-04462-8.
214. Shen X., Chen J., Lv S., Sun X., Dzantiev B.B., Eremin S.A., Zherdev A.V., Xu J., Sun Y., Lei H. Fluorescence polarization immunoassay for determination of enrofloxacin in pork liver and chicken // Molecules. 2019, v. 24, № 24, # 4462, doi: 10.3390/molecules24244462.
215. Shleeva M.O., Kondratieva T.K., Goncharenko A.V., Apt A.S., Kaprelyants A.S. The role of cAMP-dependent RpfA protein synthesis in the reactivation of dormant mycobacteria // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, # P-41-038, p. 420-420, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
216. Shleeva M.O., Savitsky A.P., Nikitushkin V.D., Solovyev I.D, Kazachkina N.I., Perevarov V.V., Kaprelyants A.S. Photoinactivation of dormant Mycobacterium smegmatis due to its endogenous porphyrins // Applied Microbiology and Biotechnology. 2019, v. 103, № 23-24, p. 9687-9695, doi: 10.1007/s00253-019-10197-3.
217. Skvortsova YV, Salina EG, Burakova EA, Bychenko OS, Stetsenko DA, Azhikina TL. A New Antisense Phosphoryl Guanidine Oligo-2′-O-Methylribonucleotide Penetrates Into Intracellular Mycobacteria and Suppresses Target Gene Expression // Frontiers in Pharmacology. 2019, v. 10, # 1049, doi: 10.3389/fphar.2019.01049.
218. Slobodkin A., Slobodkina G., Allioux M., Alain K., Jebbar M., Shadrin V., Kublanov I., Toshchakov S., Bonch-Osmolovskaya E. Genomic insights into the carbon and energy metabolism of a thermophilic deep-sea bacterium Deferribacter autotrophicus revealed new metabolic traits in the phylum Deferribacteres // Genes. 2019, v. 10, № 11, # 849, doi: 10.3390/genes10110849.
219. Slonimskiy Y., V Botnarevskii, E Maksimov, T Friedrich, N Sluchanko. Reversible light-dependent carotenoid transfer between water-soluble proteins suggests a new way to modulate the OCP-based photoprotection in cyanobacteria // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl.1, p. 306-307, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
220. Slugina M., Filyushin M., Shchennikova A., Kochieva E., Skryabin K. SUS4 and PHO1a are the main prolonged cold stress responsive genes in Solanum tuberosum tubers // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, S1, # P-28-014, p. 283-283, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
221. Slugina M., Kochieva E., Shchennikova A. INH2, PAIN-1 and SUS4 co-expression data reveals that only sucrose synthase can serve as a sign of cold-resistance in wild potato species // FEBS Open Bio. 2019, v. 9(S1), # ShT-32-2, p. 54-54, doi: 10.1002/2211-5463.12674.
222. Sobolev A.M., Byzova N.A., Goryacheva I.Yu., Zherdev A.V. Silanized quantum dots as labels in lateral flow test strips for C-reactive protein // Analytical Letters. 2019, v. 52, № 12, p. 1874-1887, doi: 10.1080/00032719.2019.1574302.
223. Sokol M.B., Nikolskaya E.D., Yabbarov N.G., Zenin V.A., Faustova M.R., Belov A.V., Zhunina O.A., Mollaev M.D., Zabolotsky A.I., Tereshchenko O.G., Severin E.S. Development of novel PLGA nanoparticles with co-encapsulation of docetaxel and abiraterone acetate for a highly efficient delivery into tumor cells // Journal of Biomedical Materials Research-Part B Applied Biomaterials. 2019, v. 107, № 4, p. 1150-1158, doi: 10.1002/jbm.b.34208.
224. Sorokin D.Y., Elcheninov A.G., Toshchakov S.V., Bale N.J., Sinninghe Damste J.S., Khijniak T.V., Kublanov I.V. Natrarchaeobius chitinivorans gen. nov., sp. nov., and Natrarchaeobius halalkaliphilus sp. nov., alkaliphilic, chitin-utilizing haloarchaea from hypersaline alkaline lakes // Systematic and Applied Microbiology. 2019, v. 42, p. 309-318, doi: 10.1016/j.syapm.2019.01.001.
225. Sorokin D.Y., Khijniak T.V., Elcheninov A.G., Toshchakov S.V., Kostrikina N.A., Bale N.J., Sinninghe Damste J.S., Kublanov I.V. Halococcoides cellulosivorans gen. nov., sp. nov., an extremely halophilic cellulose-utilizing haloarchaeon from hypersaline lakes // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, p. 1327-1335, doi: 10.1099/ijsem.0.003312.
226. Sorokin D.Y., Yakimov M., Messina E., Merkel A.Y., Bale N.J., Sinninghe Damsté J.S. Natronolimnobius sulfurireducens sp. nov. and Halalkaliarchaeum desulfuricum gen. nov., sp. nov., the first sulfur-respiring alkaliphilic haloarchaea from hypersaline alkaline lakes // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 9, p. 2662-2673, doi: 10.1099/ijsem.0.003506.
227. Sotnikov D.V., Berlina A.N., Ivanov V.S., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Adsorption of proteins on gold nanoparticles: One or more layers? // Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2019, v. 173, p. 557-563, doi: 10.1016/j.colsurfb.2018.10.025.
228. Spaggiari D., Desfontaine V., Cruchon S., Guinchard S., Vocat A., Blattes E., Pitteloud J., Ciullini L., Bardinet C., Ivanyuk A., Makarov V., Ryabova O., Buclin T., Cole S., Decosterd A. L. Development and validation of a multiplex UHPLC-MS/MS method for the determination of the investigational antibiotic against multi-resistant tuberculosis macozinone (PBTZ169) and five active metabolites in human plasma // PLoS ONE. 2019, v. 14, № 5, # e0217139, p. 1-22, doi: 10.1371/journal.pone.0217139.
229. Suvorovs Yu.M., Korotkov E.V. New Method for Potential Fusions Detection in Protein-Coding Sequences // Journal of Computational Biology. 2019, v. 26, № 11, p. 1253-1261, doi: 10.1089/cmb.2019.0122.
230. Syrkina M, Viushkov V, Potashnikova D, Veiko V, Vassetzky Y, Rubtsov M. From an increase in the number of tandem repeats through the decrease of sialylation to the downregulation of MUC1 expression level // Journal of Cellular Biochemistry. 2019, v. 120, № 3, p. 4472-4484, doi: 10.1002/jcb.27735.
231. Tereshkin E., Tereshkina K., Loiko N., Chulichkov A., Kovalenko V., Krupyanskii Y. Interaction of deoxyribonucleic acid with deoxyribonucleic acid-binding protein from starved cells: cluster formation and crystal growing as a model of initial stages of nucleoid biocrystallization // Journal of Biomolecular Structure and Dynamics. 2019, p. 1-8, doi: 10.1080/07391102.2018.1492458.
232. Tikhonova EN, Grouzdev DS, Kravchenko IK. Azospirillum palustre sp.nov., a methylotrophic nitrogen-fixing species isolated from raised bog // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019, v. 69, № 9, p. 2787-2793, doi: 10.1099/ijsem.0.003560.
233. Tugaeva K, J Titterington, A Antson, N Sluchanko. Structural basis for the interaction of 14-3-3 proteins with phosphopeptides of STARD1 revealed by the chimeric app // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, p. 257-257, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
234. Tugaeva K. V., Sluchanko N.N. Steroidogenic Acute Regulatory Protein: Structure, Functioning, and Regulation // Biochemistry (Moscow). 2019, v. 84, S, p. 233-253, doi: 10.1134/S0006297919140141.
235. Tugaeva K., Kalacheva D., Sluchanko N. 14-3-3 protein chimera with its full-length phosphorylated partner protein HSPB6: design, solution structure and dynamics // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, Suppl. 1, p. 260-260, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
236. Turaev A. V., Tsvetkov V. B., Tankevich M. V., Smirnov I. P., Aralov A. V., Pozmogova G.E., Varizhuk A. M. Benzothiazole-based cyanines as fluorescent “light-up” probes for duplex and quadruplex DNA // Biochimie. 2019, v. 162, p. 216-228, doi: 10.1016/j.biochi.2019.04.018.
237. Tutelyan A.V., Nikolaev Y.A., El-Registan G.I. BINARY DRUGS ARE A PROMISING DIRECTION FOR OPTIMIZING THE TREATMENT OF INFECTIOUS DISEASES, INCLUDING HAIS // Antimicrobial Resistance and Infection Control. 2019, v. 8, S1, p. 148-150, doi: 10.1186/s13756-019-0567-6.
238. V.V. Nefedova, M.A. Marchenko, Y.G. Ermakova, D.V. Shchepkin, G.V. Kopylova, S.R. Nabiev, S.Y. Bershitsky, A.M. Matyushenko. Unique properties of brain-specific tropomyosin isoforms // Journal of Muscle Research and Cell Motility. 2019, v. 40, p. 232-233, doi: 10.1007/s10974-019-09534-w.
239. Vakhrusheva A., Endzhievskaya S., Zhuikov V., Nekrasova T., Parshina E., Ovsiannikova N., Popov V.V., Bagrov D., Minin A.A., Sokolova O.S. The role of vimentin in directional migration of rat fibroblasts // Cytoskeleton. 2019, v. 76, p. 467-476, doi: 10.1002/cm.21572.
240. Varvara Yu. Sekova, Daria I. Dergacheva, Elena P. Isakova, Natalya N. Gessler, Vera M. Tereshina, Yulia I. Deryabina. Soluble Sugar and Lipid Readjustments in the Yarrowia lipolytica Yeast at Various Temperatures and pH // Metabolites. 2019, v. 9, № 12, # 307, p. 1-23, doi: 10.3390/metabo9120307.
241. Voinova V., Bonartseva G., Bonartsev A. Effect of poly(3-hydroxyalkanoates) as natural polymers on mesenchymal stem cells // World Journal of Stem Cells. 2019, v. 11, № 10, p. 1-22, doi: 10.4252/wjsc.v11.i10.0000.
242. Volkov P.V., Gusakov A.V., Rubtsova E.A., Rozhkova A.M., Matys V.Yu., Nemashkalov V.A., Sinitsyn A.P. Properties of a recombinant GH49 family dextranase heterologously expressed in two recipient strains of Penicillium species // Biochimie. 2019, v. 157, p. 123-130, doi: 10.1016/j.biochi.2018.11.010.
243. Voronina MV, EN Bugaeva, DM Vasiliev, AP Kabanova, AP Barannik, MM Shneider, EE Kulikov, AA Korzhenkov, SV Toschakov, AN Ignatov, KA Miroshnikov. Характеристика бактериофага Pectobacterium carotovorum supsp. carotovorum PP16, перспективного для биоконтроля мягкой гнили картофеля // Микробиология. 2019, т. 88, № 4, с. 458-469, doi: 10.1134/S0026365619040116.
244. Voronina MV, Kabanova AP, Shneider MM, Korzhenkov AA, Toschakov SV, Miroshnikov KK, Miroshnikov KA, Ignatov AN. First Report of Pectobacterium carotovorum subsp. brasiliense Causing Blackleg and Stem Rot Disease of Potato in Russia // Plant Disease. 2019, v. 103, № 2, p. 364-364, doi: 10.1094/PDIS-03-18-0456-PDN.
245. Vostrikova N., Chernukha I., Kovalev L., Schkabrov O. CHANGES IN THE PSE AND DFD PORCINE MUSCLE PROTEOME DURING AUTOLYSIS // Journal of Animal Science. 2019, v. 97, S3, p. 337-338, doi: 10.1093/jas/skz258.673.
246. Yakovleva I.V., Zhuravleva E.V., Kamionskaya A.M. Genetic technologies as the base of better crop productivity in Russia // FEBS Open Bio. 2019, v. 9, S1, # P-28-006, p. 280-281, doi: 10.1002/2211-5463.12675.
247. Yurkova M.S., Zenin V.A., Nagibina G.S., Melnik B.S., Fedorov A.N. Physico-Chemical Characterization of Permutated Variants of Chaperone GroEL Apical Domain // Applied Biochemistry and Microbiology. 2019, v. 55, № 6, p. 588-595, doi: 10.1134/S0003683819130027.
248. Zakharenko AS, Galachyants YP, Morozov IV, Shubenkova OV, Morozov AA, Ivanov VG, Pimenov NV, Krasnopeev AY, Zemskaya TI. Bacterial Communities in Areas of Oil and Methane Seeps in Pelagic of Lake Baikal // Microbial Ecology. 2019, v. 78, № 2, p. 269-285, doi: 10.1007/s00248-018-1299-5.
249. Zeifman Yu.S., Boyko K.M., Nikolaeva A.Yu., Timofeev V.I., Rakitina T.V., Popov V.O., Bezsudnova E.Yu. Functional characterization of PLP fold IV transaminase with a mixed type of activity from Haliangium ochraceum // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Proteins and Proteomics. 2019, v. 1867, № 6, p. 575-585, doi: 10.1016/j.bbapap.2019.03.005.
250. А.Е. Панюшкина. Метаболический потенциал Sulfobacillus thermotolerans: пути ассимиляции соединений азота и возможность литотрофного роста в присутствии молекулярного водорода // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 719-724, doi: 10.1134/S0026365619060132.
251. Актуганов Г.Э., Мелентьев А.И., Варламов В.П. Биотехнологические аспекты ферментативного получения биоактивных хитоолигосахаридов (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 4, с. 315-337, doi: 10.1134/S0555109919040020.
252. Алексеева Л.М., Узун М.М., Козяева В.В., Сухачева М.В., Патутина Е.О., Слободова Н.В., Груздев Д.С. Использование маркерного гена mamK для изучение разнообразия магнитотактических бактерий // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2019, т. 37, с. 12-12, doi: 10.17116/molgen2019s-tez.
253. Андрюшина В.А., Стыценко Т.С., Карпова Н.В., Ядерец В.В., Джавахия В.В. Получение эфиров стеринов растительного и животного происхождения как ключевых производных для синтеза дегидроэпиандростерона // Химико-фармацевтический журнал. 2019, т. 53, № 11, с. 20-23.
254. Андрюшина В.А., Т.С. Стыценко, Н.В. Карпова, В.В. Ядерец, И.В. Заварзин, б Д.В. Курилов. Синтез 3β-метилового эфира дегидроэпиандростерона методом биотрансформации 3β-метилового эфира холестерина клетками микобактерий Mycobacterium sp. // Известия Академии наук. Серия химическая. 2019, т. 12, с. 2355-2358.
255. Бегунова А.В., Рожкова Ирина В., Зверева Елена А., Глазунова Ольга А., Федорова Татьяна В. Молочнокислые и пропионовокислые бактерии: формирование сообщества для получения функциональных продуктов с бифидогенными и гипотензивными свойствами // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 566-577, doi: 10.1134/S0555109919060047.
256. Богданов А.А., Соловьев И.Д., Савицкий А.П. Сенсоры для визуализации протеолитической активностии их применение в моделях болезни человека // Успехи биологической химии. 2019, т. 59, c. 3-38.
257. Болычевцева Ю.В., Терехова И.В., Шубин В.В., Юрина Н.П. Термостабильность мономеров и тримеров фотосистемы I цианобактерии Arthrospira platensis // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 3, с. 286-292, doi: 10.1134/S055510991903005X.
258. Бурганская Е.И., Груздев Д.С., Круткина М.С., Горленко В.М. Бактериальные сообщества микробных матов супралиторали Белого моря и отделившихся от моря озер // Микробиология. 2019, т. 88, № 5, с. 568-582, doi: 10.1134/S0026365619050033.
259. Бызова Н.А., Жердев А.В., Придворова С.М., Дзантиев Б.Б. Разработка экспрессной иммунохроматографической тест-системы для детекции D-димера // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 3, с. 293-302.
260. Волков П.В., Ю.А. Денисенко, А.М. Рожкова, А.П. Синицын. Экспрессия химерной полисахаридмонооксигеназы с присоединенным целлюлозосвязывающим модулем в штамме-реципиенте Peniciolium verruculosum // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2019, т. 37, с. 22-22, doi: 10.17116/molgen2019s-tez.
261. Горленко В.М., Бурганская Е.И., Брянцева И.А. Фототрофные сообщества высокоминерализованных мезотермальных сульфидных Берикейских источников (Дагестан). // Микробиология. 2019, т. 88, № 2, с. 154-164, doi: 10.1134/S0026365619020046.
262. Данилова О. А., Терешина В.М. Влияние триспороидов на липогенез т (–) штамма мицелиального гриба Blakeslea trispora // Микробиология. 2019, т. 88, № 1, с. 120-122, doi: 10.1134/S0026365619010038.
263. Дёмкина Е.В., Е.В. Дорошенко, Т. Л. Бабич, В. В. Миронов, А. В. Борисов, Т. С. Дёмкина, Г. И. Эль-Регистан. Погребенные почвы как нетрадиционный источник выделения биотехнологически значимых штаммов бактерий // Микробиология. 2019, т. 88, № 5, с. 605-618, doi: 10.1134/S0026365619050057.
264. Дергачева Д.И., Машкова А.А., Исакова Е.П., Гесслер Н.Н., Дерябина Ю.И. Действие ресвератрола и дигидрокверцетина на физиолого-биохимические характеристики полиэкстремофильных дрожжей Yarrowia lipolytica в условиях температурного стресса. // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 2, с. 158-165, doi: 10.1134/S0555109919020041.
265. Дорофеев А. Г., Николаев Ю. А., Марданов А. В., Пименов Н. В. ЦИКЛИЧЕСКИЙ МЕТАБОЛИЗМ КАК СПОСОБ СУЩЕСТВОВАНИЯ МИКРООРГАНИЗМОВ // Микробиология. 2019, т. 88, № 4, с. 401-416, doi: 10.1134/S0026365619040050.
266. Дрозд Н.Н., А.П. Луньков, А.В. Ильина, В.П. Варламов. Гемосовместимость в опытах in vitro наночастиц серебра на основе конъюгата кватернизированного хитозана с галловой кислотой // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2019, т. 168, № 10, с. 496-500.
267. Дрозд Н.Н., Ю.С. Логвинова, Б.Ц. Шагдарова, А.В. Ильина, В.П. Варламов. Анализ действия кватернизированных хитозанов c разной молекулярной массой на антикоагулянтную активность гепаринов в опытах in vitro // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2019, т. 167, № 2, с. 240-245.
268. Дудун А.А., Акулина Е.А., Воинова В.В., Махина Т.К., Мышкина В.Л., Жуйков В.А., Бонарцев А.П., Бонарцева Г.А. Биосинтез альгината и поли(3-оксибутирата) бактериальным штаммом Azotobacter agile 12 // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 559-565, doi: 10.1134/S0555109919060072.
269. Жгун А. А., Нураева Г.К., Думина М.В., Воинова Т. М., Джавахия В. В., Эльдаров М.А. Повышение уровня продукции ловастатина и экспрессии lov-генов 1,3-диаминопропаном и спермидином через регуляцию LaeA У Aspergillus terreus // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 3, с. 244-255, doi: 10.1134/S055510991902017X.
270. Жгун А.А., Нураева Г.К., Эльдаров М.А. Роль регуляторов LaeA И LovE в биосинтезе ловастатина при добавлении полиаминов у Aspergillus terreus // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 542-552, doi: 10.1134/S0555109919060175.
271. Журина М. В., Николаев Ю. А., Плакунов В. К. Роль внеклеточного полимерного матрикса в защитном эффекте при действии антибиотика азитромицина на Chromobacterium violaceum // Микробиология. 2019, т. 88, № 4, с. 497-500, doi: 10.1134/S0026365619040153.
272. Замахаев М.В., Гончаренко А.В., Шумков М.С. Токсин-антитоксиновые системы и бактериальная персистенция (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 523-534, doi: 10.1134/S055510991906014X.
273. Земская Т.И., А.С. Захаренко, И.И. Русанов, С.В. Букинa, Т.В. Погодаева, О.Г. Нецветаева, В.Г. Иванов, Ю.Р. Штыкова, Н.В. Пименов. Экология приустьевых акваторий малых рек южного Байкала по данным химических и микробиологических исследований в весенний период // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 673-684, doi: 10.1134/S002636561906020X.
274. Зенин В.А., Новикова Л.А., Юркова М.С., Саввин О.И., Куров К.А., Федоров А.Н. Химическая модификация слитого белка на основе шаперона GroEL из Thermus thermophilus ингибитором протеаз AEBSF // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 553-558, doi: 10.1134/S0555109919060163.
275. Иванова А.Е., Канатьева А.Ю., Курганов А.А.. Аэробная биодеградация жидких моторных топлив в условиях экстремальной кислотности // Микробиология. 2019, т. 88, № 3, с. 318-327, doi: 10.1134/S0026261719030044.
276. Кpаcновcкий А.А., А.С. Бендиткис, А.C. Козлов. Кинетические измерения фосфоресценции синглетного кислорода методом разрешенного во времени счета фотонов в растворителях, не содержащих водородных атомов // Биохимия. 2019, т. 84, № 2, p. 240-251, doi: 10.1134/S0006297919020068.
277. Кадников В.В., Груздев Е.В., Ивасенко Д.А., Белецкий А.В., Марданов А.В., Данилова Э.В., Карначук О.В., Равин Н.В. Селекция микробного сообщества при формировании кислого шахтного дренажа // Микробиология. 2019, т. 88, № 3, с. 309-317, doi: 10.1134/S0026365619030054.
278. Кадников В.В., Марданов А.В., Белецкий А.В., Анциферов Д.В., Ковалева А.А., Карначук О.В., Равин Н.В. Сероокисляющие бактерии доминируют в воде затопленной угольной шахты в Кузбассе // Микробиология. 2019, т. 88, № 1, с. 123-126, doi: 10.1134/s0026365619010117.
279. Кадников В.В., Марданов А.В., Белецкий А.В., Франк Ю.А., Карначук О.В., Равин Н.В. Геном археи кандидатного филума Verstraetearchaeota из подземных термальных вод выявил пути метил-редуцирующего метаногенеза и ферментативного метаболизма // Микробиология. 2019, т. 88, № 3, с. 336-344, doi: 10.1134/S0026365619030066.
280. Кадников В.В., Марданов А.В., Белецкий А.В., Франк Ю.А., Карначук О.В., Равин Н.В. Полный геном некультивируемой бактерии кандидатного филума Bipolaricaulota // Микробиология. 2019, т. 88, № 4, с. 470-478, doi: 10.1134/S0026365619040062.
281. Кадников В.В., Марданов А.В., Ивасенко Д.А., Анциферов Д.В., Белецкий А.В., Карначук О.В., Равин Н.В. Новый бактериофаг порядка Caudovirales, обнаруженный в метагеноме грунта в районе подземного горения угля // Микробиология. 2019, т. 88, № 2, с. 240-244, doi: 10.1134/s0026365619020150.
282. Каллистова А.Ю., Сабреков А.Ф., Гончаров В.М., Пименов Н.В., Глаголев М.В. К вопросу об использовании статистического анализа при интерпретации результатов экспериментов в области экологической микробиологии // Микробиология. 2019, т. 88, № 2, с. 230-239, doi: 10.1134/S002626171902005X.
283. Каллистова А.Ю., Саввичев А.С., Русанов И.И., Пименов Н.В. Термокарстовые озера – экосистемы с интенсивными микробными процессами цикла метана // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 631-644, doi: 10.1134/S0026365619060041.
284. Карпова Н.В., Стыценко Т.С., Ядерец В. В., Андрюшина В.А., Джавахия В. В. Оптимизация способа получения 9альфа-гидрокси-андрост-4-ен-3,17-диона-ключевого интермедиата в синтезе высокоактивных фторированных кортикостероидов из фитостеринов // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 1, с. 51-55, doi: 10.1134/S0555109919010070.
285. Карпова Н.В., Шагдарова Б.Ц., Лялина Т.С., Ильина А.В., Терешина В.М., Варламов В.П. Влияние основных характеристик низкомолекулярного хитозана на рост фитопатогеннного гриба Botrytis cinerea // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 4, с. 386-395.
286. Космачевская О.В., Насыбуллина Э.И., Блиндарь В.Н., Топунов А.Ф. Связывание эритроцитарного гемоглобина с мембраной как способ осуществления сигнально-регуляторной функции (Обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 2, с. 107-123.
287. Кравчишина М.Д., Новигатский А.Н., Саввичев А.С., Паутова Л.А., Лисицын А.П. Исследование седиментосистем Баренцева моря и Норвежско-Гренландского бассейна в 68-м рейсе научно-исследовательского судна “Академик Мстислав Келдыш” // Океанология. 2019, т. 59, № 1, с. 173-176, doi: 10.31857/S0030-1574591173-176.
288. Красновский А.А., Козлов А.С., Бендиткис А.С. Сравнительный анализ фотодинамической активности растворенного кислорода и порфиринов // Макрогетероциклы. 2019, т. 12, № 2, с. 171-180.
289. Кулакова А.М., Хренова М.Г., Немухин А.В. Структура и динамика фоторегулируемой аденилатциклазы // Известия Академии наук. Серия химическая. 2019, т., № 11, с. 1991-1996.
290. Куликов Е.Е., Голомидова А.К., Морозова В.В., Козлова Ю.Н., Летаров А.В. Бактериофаги группы т5 как потенциальные агенты фаготерапии // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 730-734, doi: 10.1134/S0026365619060065.
291. Куличевская И.С., Д.Г.Наумов, А.А.Иванова, А.Л.Ракитин, С.Н.Дедыш. Выявление хитинолитического потенциала у пресноводного планктомицета Planctomicrobium piriforme // Микробиология. 2019, т. 88, № 4, с. 426-437.
292. Лаврентьева Е.В., Е.Б. Эрдынеева, Я.Е. Дунаевский, Ю.В. Болтянская, В.В. Кевбрин. Пептидазная активность бактерий рода Proteinivorax и их возможная экологическая роль в микробном сообществе содовых озер Танатар (Алтайский край) // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 735-739, doi: 10.1134/S0026365619060077.
293. Летаров А.В., Летарова М.А., Куликов Е.Е. Ревизия последовательности и аннотации генома бактериофага Burkholderia pseudomallei/thailandensis BP-AMP1 – потенциального природного агента, контролирующего популяции возбудителя мелиоидоза // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, 715-718, doi: 10.1134/S0026365619060089.
294. Лунина О.Н., А.С. Саввичев, В. В. Бабенко, Д. И. Болдырева, Б.Б. Кузнецов, Т.В. Колганова, Е. Д. Краснова, Н. М. Кокрятская, Е. Ф. Веслополова, Д. А. Воронов, Н. А. Демиденко, М. А. Летарова, А. В. Летаров, В. М. Горленко. Сезонные изменения структуры сообщества аноксигенных фототрофных бактерий меромиктического озера трехцветное (Кандалакшский залив Белого моря). // Микробиология. 2019, т. 88, № 1, с. 100-115, doi: 10.1134/S0026365619010051.
295. Лунина О.Н., Жильцова A.A., Емельянцев П.С., Саввичев А.С., Пацаева С.В. Количественное определение бактериохлорофиллов d и е в экстрактах при совместном присутствии зелено- и коричневоокрашенных зеленых серобактерий в образцах природной воды // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 740-743, doi: 10.1134/S0026365619060090.
296. Малеева Ю.В., Неверов К.В., Обухов Ю.Н., Крицкий М.С. Водорастворимые хлорофиллсвязывающие белки растений: структура, свойства и функции // Молекулярная биология. 2019, т. 53, № 6, с. 998-1011, doi: 10.1134/S0026898419060120.
297. Мамаев Д.В., Звягильская Р.А. Митофагия у дрожжей // Успехи биологической химии. 2019, т. 59, c. 455-472.
298. Меркель А.Ю., Тарновецкий И.Ю., Подосокорская О.А., Тощаков С.В. Анализ систем праймеров на ген 16S рРНК для профилирования термофильных микробных сообществ // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 655-664, doi: 10.1134/S0026365619060119.
299. Метелешко Ю.И., Немухин А.В., Хренова М.Г. Моделирование фотофизических свойств компонентов FRET-пар на основе флавинсодержащих флуоресцентных белков и их аналогов // Химическая физика. 2019, т. 38, № 6, с. 3-7, doi: 10.1134/S0207401X19060074.
300. Мирошников К.К., Белова С.Э., Дедыш С.Н. Анализ генных детерминант фототрофии у метанотрофных представителей Alphaproteobacteria // Микробиология. 2019, т. 88, № 5, с. 532-540, doi: 10.1134/S0026365619050112.
301. Муравьев М.И., Фомченко Н.В. Химическое выщелачивание низкокачественного цинкового концентрата биораствором трехвалентного железа // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 4, с. 396-402, doi: 10.1134/S0555109919040123.
302. Мысякина И.С., Сорокин В.В., Дорофеева И.К., Бокарева Д.А. Исследование элементного состава покоящихся и прорастающих спор грибов // Микробиология. 2019, т. 88, № 4, с. 450-457, doi: 10.1134/S0026365619040098.
303. Новикова Н.Н., Якунин С.Н., Ковальчук М.В., Юрьева Э.А., Степина Н.Д., Рогачев А.В., Кременная М.А., Яловега Г.Э., Космачевская О.В., Топунов А.Ф. Возможности рентгеновской абсорбционной спектроскопии в геометрии полного внешнего отражения для исследования белковых пленок на жидкости // Кристаллография. 2019, т. 64, № 6, с. 945-951, doi: 10.1134/S0023476119060134.
304. Новичкова Е.А., Саввичев А.С., Баширова Л.Д., Козина Н.В., Клювиткин А.А., Политова Н.В., Новигатский А.Н., Леин А.Ю. Литолого-биогеохимические исследования седиментосистемы Северной Атлантики (по материалам 49-го рейса научно-исследовательского судна «Академик Иоффе») // Океанология. 2019, т. 59, № 4, с. 641-655, doi: 10.31857/S0030-1574594641-655.
305. Новоселова Е. А., Рябова О. Б., Ленева И. А., Макаров В. А. Специфическая противовирусая активность пиримидин-диспиротрипиперазиния в монотерапии и в комбинации с ацикловиром на модели герпесвирусной инфекции // Химико-фармацевтический журнал. 2019, т. 53, № 9, с. 3-8, doi: 10.30906/0023-1134-2019-53-9-3-8.
306. Ножевникова А.Н., Миронов В.В., Бочкова Е.А., Литти Ю.В., Русскова Ю.И. Состав микробного сообщества на разных стадиях компостирования, перспектива получения компоста из муниципальных органических отходов // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 3, с. 211-221, doi: 10.1134/S0555109919030103.
307. Осипов Е.М., Гендриксон О.Д., Тихонова Т.В., Жердев А.В., Солопова О.Н., Свешников П.Г., Дзантиев Б. Б., Попов В.О. Структура Fab-фрагментов антител к фуллерену C60: Структурные детерминанты связывания фуллерена // Acta Naturae. 2019, v. 11, № 1 (40), p. 58-65.
308. Панфёрова Н.А., Панфёров В.Г., Сафенкова И.В., Варицев Ю.А., Жердев А.В., Дзантиев Б.Б. Разработка иммуноферментного анализа Х-вируса картофеля с тираминовой амплификацией // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 4, с. 410-416.
309. Плакунов В. К., Николаев Ю. А., Ганнесен А. В., Чемаева Д. С., Журина М. В. Новый подход к выявлению защитной роли Esherichia coli в отношении грамположительных бактерий при действии антибиотиков на бинарные биопленки // Микробиология. 2019, т. 88, № 3, с. 289-296, doi: 10.1134/S0026365619030091.
310. Плакунов В.К., М. В. Журина, А. В. Ганнесен, С. В. Мартьянов, Ю. А. Николаев. Антибиопленочные агенты: неоднозначность терминологии и стратегия поиска // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 705-709, doi: 10.1134/S0026365619060144.
311. Полозников А.А., Христиченко А.Ю., Смирнова Н.А., Хушпульян Д.М., Гайсина И.Н., Осипьянц А.И., Тишков В.И., Газарян И.Г. Структурная оптимизация адаптахина-ингибитора HIF пролилгидроксилазы // Известия Академии наук. Серия химическая. 2019, т., № 1, с. 168-173.
312. Полюдова Т.В., Шагдарова Б.Ц., Коробов В.П., Варламов В.П. Бактериальная адгезия и образование биопленок в присутствии хитозана и его производных // Микробиология. 2019, т. 88, № 2, с. 129-136, doi: 10.1134/S0026365619020083.
313. Пшенникова Е.С., Воронина А.С. Нервный гребень – своеобразная популяция эмбриональных клеток // Молекулярная биология. 2019, т. 53, № 2, с. 256-267, doi: 10.1134/S0026898419020137.
314. Р. Ю. Котляров, А. В. Белецкий, А. Ю. Каллистова, А. Г. Дорофеев, Ю. А. Николаев, Н. В. Пименов, Н. В. Равин, А. В. Марданов. НОВЫЕ ФОСФАТ-Аккумулирующие бактерии, обнаруженные в установке для очистки сточных вод от фосфатов // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 710-714, doi: 10.1134/S0026365619060053.
315. Рылькова О.А., Гулин С.Б., Пименов Н.В. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОБЩЕЙ ЧИСЛЕННОСТИ МИКРООРГАНИЗМОВ В ДОННЫХ ОСАДКАХ ЧЕРНОГО МОРЯ МЕТОДОМ ПРОТОЧНОЙ ЦИТОМЕТРИИ // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 685-694, doi: 10.1134/S0026365619060181.
316. Саввичев А.С., Кадников В.В., Каллистова А.Ю., Русанов И.И., Воронов Д.А., Краснова Е.Д., Равин Н.В., Пименов Н.В. Фотозависимое окисление метана – важнейший процесс цикла метана в водной толще полярного озера Большие Хрусломены // Микробиология. 2019, т. 88, № 3, с. 367-371, doi: 10.1134/S0026365619030108.
317. Савинова Ольга С., Сольев П.Н., Васина Дарья В., Тяжелова Татьяна В., Федорова Татьяна В., Савинова Татьяна С. Biotransformation of progesterone by Aspergillus nidulans VKPM F-1069 (wild type) // Steroids. 2019, v. 149, # 108421, p. 1-8, doi: 10.1016/j.steroids.2019.05.013.
318. Семенова Е.М., Груздев Д.С., Турова Т.П., Назина Т.Н. Физиология и геномные характеристики бактерии Geotoga petraea, выделенной из низкотемпературного нефтяного месторождения (Россия) // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 645-654, doi: 10.1134/S002636561906017X.
319. Семенова М.В., А.М. Рожкова, Д.О. Осипов, А.Д. Сатрутдинов, О.А. Синицына, Е.А. Рубцова, Е.Г. Кондратьева, А.П. Синицын. Подбор оптимального комплекса ферментов для гидролиза углеводов свекловичного жома // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 586-593, doi: 10.1134/S0555109919050118.
320. Сердюк Е.Г., Е. П. Исакова, Н. Н. Гесслер, Е. В. Трубникова, А. Н. Антипов, Ю. И. Дерябина. Активность нейтральной фитазы из Obesumbacterium proteus в рекомбинантных штаммах дрожжей Yarrowia lipolytica при культивировании на низкосортных растительных субстратах // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 5, с. 498-505, doi: 10.1134/S055510991905012X.
321. Слободкин А. И., Слободкина Г.Б. Разноообразие микроорганизмов, диспропорционирующих соединения серы // Микробиология. 2019, т. 88, № 5, с. 503-518, doi: 10.1134/S0026365619050148.
322. Сургучева Н.А., Филиппова С.Н., Куликов Е.Е., Брушков А.В., Рогов В.В. ФАГОВЫЕ ЧАСТИЦЫ В ПОДЗЕМНЫХ ЛЬДАХ АРКТИКИ // Микробиология. 2019, т. 88, № 2, с. 224-229, doi: 10.1134/S0026365619020162.
323. Тарновецкий И.Ю., Меркель А.Ю., Пименов Н.В. Анализ культивируемых форм метаногенных архей прибрежных метановых сипов полуострова тарханкут // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 665-672, doi: 10.1134/S0026365619060181.
324. Терешкин Э.В., К. Б. Терешкина, В. В. Коваленко, Н. Г. Лойко, Ю. Ф. Крупянский. Структура комплексов белка DPS с ДНК // Химическая физика. 2019, т. 38, № 10, с. 48-57, doi: 10.1134/S0207401X19100091.
325. Тихонова Е.Н., Менько Е.В., Уланова Р.В., Ли Х., Кравченко И.К. Влияние температуры на таксономическую структуру бактериальных сообществ почв при разложении лесного опада // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 744-748, doi: 10.1134/S0026365619060193.
326. Узун М., Алексеева Л.М., Круткина М.С., Козяева В.В., Груздев Д.С. Расширение знаний о разнообразии магнитотактических бактерий посредством анализа метагеномных данных // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2019, т. 37, с. 49-49, doi: 10.17116/molgen2019s-tez.
327. Филиппова С.Н., Сургучева Н.А., Колганова Т.В., Чербунина М.Ю., Брушков А.В., Мулюкин А.Л., Гальченко В.Ф. Выделение и идентификация бактерий из образцов жильного льда ледового комплекса мамонтовой горы (Центральная Якутия) // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. 2019, т., № 3, с. 246-254.
328. Филиппович С.Ю., М.В. Онуфриев, Г.П. Бачурина, М.С. Крицкий. Роль оксида азота в фотоморфогенезе Neurospora crassa // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 4, с. 403-409, doi: 10.1134/S0555109919030073.
329. Филькин С.Ю., Чертова Н.В., Зенин В.А., Липкин А.В., Садыхов Э.Г., Фёдоров А.Н. Разработка масштабируемого метода выделения и очистки рекомбинантной секреторной фосфолипазы а2 при экспрессии в метилотрофных дрожжах Pichia pastoris // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 578-585, doi: 10.1134/S0555109919060084.
330. Филюшин М.А., Дьяченко Е.А., Хатефов Э.Б., Щенникова А.В., Кочиева Е.З., Скрябин К.Г. Аллельный полиморфизм гена INVINH1 у образцов кукурузы из коллекции ВИР // Генетика. 2019, т. 55, № 11, с. 1-8, doi: 10.1134/S0016675819110043.
331. Филюшин М.А., Е. З. Кочиева, А. В. Щенникова, А. В. Белецкий, А. В. Марданов, Н. В. Равин, К. Г. Скрябин. Идентификация и анализ экспрессии генов хитиназ в ловчих аппаратах насекомоядного растения Nepenthes sp. в процессе развития // Доклады Академии наук. Биохимия и биофизика. 2019, т. 484, № 3, с. 358-362, doi: 10.31857/S0869-56524843358-362.
332. Филюшин М.А., Кочиева Е.З., Щенникова А.В., Белецкий А.В., Марданов А.В., Равин Н.В., Скрябин К.Г. Профиль экспрессии генов унипортеров семейства SWEET в процессе развития ловчих аппаратов плотоядного растения Nepenthes sp // Генетика. 2019, т. 55, № 6, с. 655-664, doi: 10.1134/S0016675819050084.
333. Филюшин М.А., М. А. Слугина, Е. З. Кочиева, А. В. Щенникова. Характеристика генов-гомологов inner no outer у дикорастущих видов томата // Генетика. 2019, т. 55, № 2, с. 223-228, doi: 10.1134/S0016675819020073.
334. Фомченко Н.В., Муравьев М.И. Анализ качества отходов в двухстадийной биогидрометаллургической технологии переработки медно-цинкового концентрата // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 1, с. 64-68, doi: 10.1134/S0555109919010057.
335. Хренова М.Г., Коц Е.Д., Кулакова А.М., Немухин А.В. Реконструкция электронной плотности интермедиатов реакции гидролиза N-ацетиласпартата аспартоацилазой // Журнал физической химии. 2019, т. 93, № 10, с. 1470-1476.
336. Чернышева Е.В., Н. Н. Каширская, Е. В. Демкина, Д. С. Коробов, А. В. Борисовa. ТЕРМОФИЛЬНЫЕ МИКРООРГАНИЗМЫ В ПОЧВАХ КАК РЕЗУЛЬТАТ ХОЗЯЙСТВЕННОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ЧЕЛОВЕКА В ДРЕВНОСТИ // Микробиология. 2019, т. 88, № 5, с. 624-626, doi: 10.1134/S0026365619050045.
337. Чумикина Л.В., Арабова Л.И., Колпакова В.В., Топунов А. Ф. Роль фитогормонов в регуляции устойчивости семян пшеницы, ржи и тритикале к действию повышенных температур при прорастании // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 1, с. 77-85.
338. Шанин И.А., Зверева Е.А., Еремин С.А., Свиридов О.В., Жердев А.В., Дзантиев Б.Б. Разработка иммуноферментного анализа для контроля суммарного содержания антибиотиков фторхинолонового ряда в молоке // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 5, с. 513-520, doi: 10.1134/S0555109919050131.
339. Шарапова Л.С., Акулинкина Д.В., Болычевцева Ю.В., Еланская И.В., Юрина Н.П. Изучение локализации низкомолекулярных стресс-индуцируемых белков, защищающих фотосинтетический аппарат от фотодеструкции // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 1, с. 69-76, doi: 10.1134/S055510991901015X.
340. Шлеева М.О., Кондратьева Т.К., Гончаренко А.В., Апт А.С., Капрельянц А.С. Зависимый от цАМФ транскрипционный фактор Mycobacterium tuberculosis, кодируемый геном RV3676, как возможная мишень при создании противотуберкулезных соединений // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 4, с. 360-365, doi: 10.1134/S0555109919030127.
341. Шумакович Г.П., Хлупова М.Е., Васильева И.С., Зайцева Е.А., Громова Е.В., Морозова О.В., Ярополов А.И. Катализируемая лакказой полимеризация анилина на многостенных углеродных нанотрубках: влияние поверхностных карбоксильных групп на свойства полианилина // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 1, с. 46-50, doi: 10.1134/S0003683819010162.
342. Шумакович Г.П., Хлупова М.Е., Васильева И.С., Зайцева Е.А., Громова Е.В., Морозова О.В., Ярополов А.И. Лакказа-медиаторные системы как инструмент для создания антистатических/антикоррозионных защитных покрытий на основе электропроводящего полианилина // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 6, с. 602-607, doi: 10.1134/S0555109919060126.
343. Эльдаров М.А., Авданина Д.А., Шаламитский М.Ю., Иванова Е.В., Танащук Т.Н., Кишковская С.А., Равин Н.В., Марданов А.В. Полиморфизм генов гомеостаза железа и чувствительность к железу у хересных и винных штаммов Saccharomyces cerevisiae // Микробиология. 2019, т. 88, № 2, с. 217-223.
344. Эльдаров М.А., Белецкий А.В., Равин Н.В., Марданов А.В. Митохондриальные геномы хересных штаммов дрожжей характеризуются низкой генетической вариабельностью // Генетика. 2019, т. 55, № 5, с. 604-608, doi: 10.1134/S0016675819050060.
345. Ю. А. Николаев, Е. В. Демкина, И. В. Перминова, Н. Г. Лойко, И. А. Борзенков, А. Е. Иванова, А. И. Константинов, Г. И. Эль-Регистан. Роль гуминовых веществ в пролонгировании жизнеспособности клеток углеводородокисляющих бактерий // Микробиология. 2019, т. 88, № 6, с. 725-729, doi: 10.1134/S0026365619060120.
346. Юрина Н.П., Одинцова М.С. Ретроградная сигнальная система хлоропластов // Физиология растений. 2019, т. 66, № 4, с. 243-255.
347. Юркова М.С., Саввин О.И., Зенин В.А., Федоров А. Н. Получение и характеристика безметионинового варианта термостабильного шаперона GroEL из Thermus thermophilus // Прикладная биохимия и микробиология. 2019, т. 55, № 2, с. 138-143, doi: 10.1134/S0555109919020156.
348. Яглова Н.В., Обернихин С.С., Назимова С.В., Яглов В.В., Космачевская О.В., Топунов А.Ф. Изменения транскрипционной регуляции постнатального морфогенеза пучковой зоны коркового вещества надпочечников эндокринным дисраптором дихлордифенилтрихлорэтаном // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2019, т. 168, № 12, с. 761-766.
349. Януцевич Е.А., Терешина В.М. Combinatorial impact of osmotic and heat shocks on the composition of membrane lipids and osmolytes in Aspergillus niger // Microbiology-SGM. 2019, v. 165, № 5, p. 554-562, doi: 10.1099/mic.0.000796.
350. Khayrova Adelya, Sergey Lopatin, Valery Varlamov. Black Soldier Fly Hermetia illucens as a Novel Source of Chitin and Chitosan // International Journal of Sciences. 2019, v. 8, № 04, p. 81-86, doi: 10.18483/ijSci.2015
351. Bulaev Aleksandr, Elena Mel’nikova, Vitaliy Melamud. Biooxidation of ferrous iron ions in a pregnant solution of oxidative leaching // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, v. 19, № 6.3, p. 51-58
352. Bulaev Aleksandr. Biooxidation of refractory pyrite-arsenopyrite gold bearing sulfide concentrate // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, v. 19, № 6.3, p. 67-74, doi: 10.5593/sgem2019V/6.3
353. Moiseenko Andrey, Natalia Loiko, Ksenia Tereshkina, Yana Danilova, Oleg Chertkov, Alexey V. Feofanov, Yurii Krupyanskii, Olga S. Sokolova. Structural studies of DNA-Dps co-crystals formation // International Journal of Biomedicine. 2019, v. 9, S1, p. 23-23, doi: 10.21103/IJBM.9.Suppl_1.P23
354. Anikin Leonid P., Olga N. Lunina, Svetlana V. Patsaeva, Vladimir A. Rashidov, Anna A. Zhiltsova. Optical characteristics of natural water samples collected in 2015-2017 in the supralittoral zone of the Alaid Volcano, the Kuril Islands // Proceedings of SPIE. 2019, v. 11322, p. 1-7, doi: 10.1117/12.2540278
355. Barshevskaya L.V., Sotnikov D.V., Zherdev A.V., Khassenov B.B., Baltin K.K., Eskendirova S.Z., Mukanov K.K., Mukantaev K.K., Dzantiev B.B. Triple immunochromatographic system for simultaneous serodiagnosis of bovine brucellosis, tuberculosis, and leukemia // Biosensors. 2019, v. 9, № 4, # 115, doi: 10.3390/bios9040115
356. Bartosh A.V., Berlina A.N., Kostenko S.N., Urusov A.E., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Development of multiplex immunochromatographic test systems for the simultaneous detection of several food contaminants // Archives of Medicine. 2019, v. 11, p. 38-38
357. Berlina A.N., Bartosh A.V., Zherdev A.V., Eremin S.A., Dzantiev B.B. Management of factors for improving antigen–antibody interaction in lateral flow immunoassay of tetracycline in human serum samples // Biomedical and Pharmacology Journal. 2019, v. 12, № 1, p. 17-24, doi: 10.13005/bpj/1609
358. Bogdanov Alexei A. Jr, Valeriy G Metelev, Toloo Taghian, Ilya Solovyev, Anand TN Kumar, Surong Zhang, Alexander Savitsky. Near-infrared oligonucleotide duplex sensors for imaging rapidly activated transcription factors in vitro and in situ // Proceedings of SPIE. 2019, v. 10877, # 1087702, p. 1-11, doi: 10.1117/12.2511124
359. Boukerb Amine M., Magalie Robert, Nataliya A. Teteneva, Natalia D. Danilova, Marina V. Zhurina, Sergey V. Mart’yanov, Vladimir K. Plakunov, Marc G. J. Feuilloley, Andrei V. Gannesen. Draft Genome Sequence of Kytococcus schroeteri Strain H01, Isolated from Human Skin // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 40, # e01081-19, doi: 10.1128/MRA.01081-19
360. Bulaev Aleksandr, Aleksandra Nechaeva, Vitaliy Melamud. Copper and zinc leaching from flotation wastes // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, v. 19, № 4.2, p. 57-64, doi: 10.5593/sgem2019/4.2
361. Bulaev Aleksandr, Khusain Valiev, Aliya Bugubayeva, Aigul Amandikova, Vitaliy Melamud. Effect of organic nutrients on biooxidation of gold-bearing refractory concentrate // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, № 1-3, p. 793-798, doi: 10.5593/sgem2019/1.3
362. Bulaev Aleksandr, Vitaliy Melamud, Anna Boduen. Two-Stage Agitation Leaching of Old Flotation Tailings // Solid State Phenomena. 2019, v. 298, p. 116-120, doi: 10.4028/www.scientific.net/SSP.298.116
363. Bulaev Aleksandr, Yulia Elkina, Elena Melnikova, Vitaliy Melamud. Effect of sodium chloride on copper bioleaching from sulfide minerals and concentrates // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, № 1-3, p. 799-804, doi: 10.5593/sgem2019/1.3
364. Bulaev Aleksandr, Yulia Elkina, Vitaliy Melamud. COPPER AND ZINC BIOLEACHING FROM ARSENIC-CONTAINING POLYMETALLIC CONCENTRATE // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, v. 19, № 6.3, p. 83-88, doi: 10.5593/sgem2019/6.3
365. Byzova N.A., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Simultaneous immunochromatographic assay of several antibiotics: Modulation of detection limits and working ranges // Oriental Journal of Chemistry. 2019, v. 35, № 6, p. 1634-1639, doi: 10.13005/ojc/350603
366. Chernukha I.M., Kovalev L.I., Mashentseva N.G., Kovaleva M.A., Vostrikova N.L. Detection of protein aggregation markers in raw meat and finished products // Foods and Raw Materials. 2019, v. 7, № 1, p. 118-123, doi: 10.21603/2308-4057-2019-1-118-123
367. Denisenko Yury A., Alexander V. Gusakov, Aleksandra M. Rozhkova, Ivan N. Zorov, Anna V. Bashirova, Veronika Yu. Matys, Vitaly A. Nemashkalov, Arkady P. Sinitsyn. Protein engineering of GH10 family xylanases for gaining a resistance to cereal proteinaceous inhibitors // Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2019, v. 17, p. 690-695, doi: 10.1016/j.bcab.2019.01.042
368. Drozd Natalia N., Balzhima Ts. Shagdarova, Yulia V. Zhuikova, Alla V. Il’ina, Michael N. Vasiliev, Tatiana M. Vasilieva, Aung Miat Hein, Valery P. Varlamov. Thromboresistant silicon plates modified with chitosan and heparin by the layer-by-layer assembly method // Progress on Chemistry and Application of Chitin and its Derivatives. 2019, v. 24, p. 5-22, doi: 10.15259/PCACD.24.001
369. Dzantiev B.B., Taranova N.A., Semeykina A.A., Zherdev A.V. Lateral flow immunoassay for bisphenol A: Development of test strips and their application for ecological monitoring // Journal of Physics: Conference Series. 2019, v. 1172, # 012088, doi: 10.1088/1742-6596/1172/1/012088
370. Elena Porotikova, Eugenia Yurchenko, Svetlana Vinogradova. Molecular identification of phytoplasmas in Russian vineyards // Phytopathogenic Mollicutes. 2019, v. 9, № 1, p. 25-26, doi: 10.5958/2249-4677.2019.00013.6
371. Godjevargova T., Ivanov Y., Atanasova M., Becheva Z., Zherdev A. Magnetic nanoparticles based fluorescence immunoassay for food contaminants // Food Science and Applied Biotechnology. 2019, v. 2, № 1, p. 38-45, doi: 10.30721/fsab2019.v2.i1.52
372. Grouzdev D.S., Babich T.L., Sokolova D.S., Tourova T.P., Poltaraus A.B., Nazina T.N. Draft genome sequence data and analysis of Shinella sp. strain JR1-6 isolated from nitrate and radionuclide-contaminated groundwater in Russia // Data in Brief. 2019, v. 25, # 104319, doi: 10.1016/j.dib.2019.104319
373. Grouzdev D.S., Lunina O.N., Gaisin V.A., Krutkina M.S., Baslerov R.V., Savvichev A.S., Gorlenko V.M. Genome sequences of green- and brown-colored strains of Chlorobium phaeovibrioides with gas vesicles // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 29, # e00711-19, doi: 10.1128/MRA.00711-19
374. Grouzdev Denis S., Ekaterina I. Burganskaya, Maria S. Krutkina, Marina V. Sukhacheva, Vladimir M. Gorlenko. Genome Sequence of “Candidatus Viridilinea halotolerans” Chok-6, Isolated from a Saline Sulfide-Rich Spring // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 4, # e01614-18, doi: 10.1128/MRA.01614-18
375. Grouzdev DS, Bidzhieva SK, Sokolova DS, Tourova TP, Poltaraus AB, Nazina TN. Draft genome sequence of a fermenting bacterium, Soehngenia sp. strain 1933P, isolated from a petroleum reservoir in Azerbaijan // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 29, # e00689-19, doi: 10.1128/MRA.00689-19
376. Grouzdev DS, Semenova EM, Sokolova DS, Tourova TP, Poltaraus AB, Nazina TN. Draft genome sequence of Geotoga petraea strain HO-Geo1, isolated from a petroleum reservoir in Russia // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 29, # e00706-19, doi: 10.1128/MRA.00706-19
377. Grouzdev DS, Tikhonova EN, Kravchenko IK. Genome Sequences of Novel Azospirillum sp. Strains B21 and Sh1, Isolated from Raised Sphagnum Bogs, and Type Strains Azospirillum lipoferum 59b and Azospirillum oryzae COC8 // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 43, # e01174-19, doi: 10.1128/MRA.01174-19
378. Hendrickson O.D., Tarannum N., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Comparison of molecularly imprinted polymers and antibodies as artificial and native receptors in the assays of antibiotics // Journal of Food and Nutritional Disorders. 2019, v. 8, p. 53-54, doi: 10.4172/2324-9323-C3-030
379. Ivanov Y., Yaneva M., Godjevargova T., Zvereva E. Immunofluorescence assay of pesticides on the base of immobilized multi-polyclonal antibody // Food Science and Applied Biotechnology. 2019, v. 2, № 1, p. 46-53, doi: 10.30721/fsab2019.v2.i1.53
380. Kadnikov V, Savvichev A, Mardanov A, Beletsky A, Ravin N, Pimenov N. Metagenomic data of the microbial community of the chemocline layer of the meromictic subarctic Lake Bolshie Hruslomeny, North European Russia // Data in Brief. 2019, v. 23, # 103800, doi: 10.1016/j.dib.2019.103800
381. Kadnikov V.V, Mardanov A.V, Frank Y.A, Beletsky A.V, Karnachuk O.V, Ravin N.V. Genomes of three bacteriophages from the deep subsurface aquifer // Data in Brief. 2019, v. 22, p. 488-491, doi: 10.1016/j.dib.2018.12.045
382. Kalashnikova O. B., Stom D. I., Kashevskii A. V., Zhdanova G. O., Bulaev A. G., Fialkov V. A. Electrochemical mechanisms of interaction of acidophilic micro-organisms with pyrite-containing wastes of mining industry // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, v. 19, № 4.2, p. 73-78, doi: 10.5593/sgem2019/4.2
383. Komova N.S., Berlina A.N., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Comparison of oligonucleotides as receptors for detection of heavy metals // Journal of Environmental Analytical Chemistry. 2019, v. 6, p. 50-50
384. Konopleva I. V., Sevast’yanov V. S., Telegina T. A. Investigation of hydrocarbon biomarkers in bio-oil produced by hydrous pyrolysis of cyanobacteria Arthrospira platensis (Spirulina) biomass // Experiment In Geosciences. 2019, v. 25, № 1, p. 120-122
385. Konovalova Mariya, Balzhima Shagdarova, Vitaliy Zubov, Elena Svirshchevskaya. Express analysis of chitosan and its derivatives by gel electrophoresis // Progress on Chemistry and Application of Chitin and its Derivatives. 2019, v. XXIV, p. 84-95, doi: 10.15259/PCACD.24.007
386. Kosmachevskaya O.V., Nasybullina E.I., Nikitaev V.G., Pronichev A.N., Polyakov E.V., Topunov A.F. Hemoglobin as substantial object for biomedical studies and diagnostics // Journal of Physics: Conference Series. 2019, v. 1189, # 012048, doi: 10.1088/1742-6596/1189/1/012048
387. Kotsyurbenko O.R., M. V. Glagolev, A. Y. Merkel, A. F. Sabrekov, I. E. Terentieva. Methanogenesis in Soils, Wetlands, and Peat // Biogenesis of Hydrocarbons. 2019, v. 01/2019, p. 1-18, doi: 10.1007/978-3-319-78108-2_9
388. Kravchenko I.V., Furalev V.A., Popov V.O. Potassium chloride from contracting muscle may stimulate development of its hypertrophy // Biochemistry and Biophysics Reports. 2019, v. 18, # 100627, doi: 10.1016/j.bbrep.2019.100627
389. Krupyanskii Y., Loiko N., Moiseenko A., Tereshkina K., Sokolova O. Condensation of Nucleoid in Bacteria as a Result of Starvation // International Journal of Biomedicine. 2019, v. 9, Suppl. 1, p. 8-8, doi: 10.21103/IJBM.9.Suppl_1.OR7
390. Lankin V.Z., Shadyro O.I., Shumaev K.B., Tikhaze A.K., Sladkova A.A. Non-Enzymatic Methylglyoxal Formation From glucose Metabolites and Generation of Superoxide Anion Radical During Methylglyoxal-Dependent Cross-Links Reaction // Journal of Antioxidant Activity. 2019, v. 1, № 4, p. 33-45, doi: 10.14302/issn.2471-2140.jaa-19-2997
391. Leporati A, Gupta S, Bolotin E, Castillo G, Alfaro J, Gottikh MB, Bogdanov-Jr. AA. Antiretroviral hydrophobic core graft-copolymer nanoparticles: the effectiveness against mutant HIV-1 strains and in vivo distribution after topical application // Pharmaceutical Research. 2019, v. 36, № 5, # 73, p. 1-12, doi: 10.1007/s11095-019-2604-9
392. Litti Y., Katraeva I., Kovalev D., Mikheeva E. Effect of the sewage sludge treatment in vortex layer apparatus on the viability of microorganisms and protozoa // Procedia Environmental Science, Engineering and Management (P-ESEM). 2019, v. 6, № 3, p. 413-421
393. Magomedaliev I.M., R. V. Nekrasov, M. G. Chabaev, V. V. Dzhavakhiya, E. V. Glagoleva, M. I. Kartashov, D. A. Durnikin, A. V. Matsyura. Use of different concentrations of Enzymesporin probiotic in feeding of growing young pigs // Ukrainian Journal of Ecology. 2019, v. 9, № 4, p. 204-208, doi: 10.15421/2019_152
394. Mardanov A.V, Chizhevskaya E.P, Lazarev A.M, Rakitin A.L, Beletsky A.V, Chebotar V.K, Ravin N.V. Complete genome sequences of endophytic bacilli isolated from grapevine plants // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 48, # e01265-19, doi: 10.1128/MRA.01265-19
395. Mardanov A.V., Kotlyarov R.V., Beletsky A.V., Nikolaev Y.A., Kallistova A.Y., Grachev V.A., Berestovskaya Y.Y., Pimenov N.V., Ravin N.V. Metagenomic data of the microbial community of lab-scale nitritation-anammox sequencing-batch bioreactor performing nitrogen removal from synthetic wastewater // Data in Brief. 2019, v. 27, # 104722, doi: 10.1016/j.dib.2019.104722
396. Martine A. R. Kox, Muhammad Farhan Ul Haque, Theo A. van Alen, Andrew T. Crombie, Mike S. M. Jetten, Huub J. M. Op den Camp, Svetlana N. Dedysh, Maartje A. H. J. van Kessel, J. Colin Murrell. Complete genome sequence of the aerobic facultative methanotroph Methylocella tundrae Strain T4 // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 20, # e00286-19, p. 1-3, doi: 10.1128/MRA.00286-19
397. Nozhevnikova Alla, Mikhail Zubov, Yuriy Litti, Ekaterina Botchkova, Y.I. Russkova, Zubov Gennadiy. Development and Practical Implementation of Partial Nitrification-Anammox Technology for Full-Scale Mainstream Treatment // Advances in Environmental Research. 2019, v. 66, p. 1-69
398. Oshkin IY, Miroshnikov KK, Dedysh SN. Draft genome sequence of Methylocystis heyeri H2T, a methanotroph with habitat-specific adaptations, isolated from a peatland ecosystem // Microbiology Resource Announcements. 2019, v. 8, № 29, # e00454-19, doi: 10.1128/MRA.00454-19
399. Ponomarenko A.M., M. V. Kevbrina, A. G. Dorofeev, Уu. A. Nikolaev, V.A. Grachev, M.N. Kozlov, A. M. Agarev. Основные результаты промышленных испытаний технологии сбраживания осадка с рециклом биомассы // Водоснабжение и санитарная техника. 2019, т. 11, с. 26-30, doi: 10.35776/MNP.2019.11.04
400. Popinako Anna. Analysis of the Structure of Serotonin 5-HT3 Receptor by X-Ray, CryoEM and MD Methods: Identification of Conformational State // International Journal of Biomedicine. 2019, v. 9, S1, p. 16-17, doi: 10.21103/IJBM.9.Suppl_1.P1
401. Safenkova I.V., Zherdev A.V., Dzantiev B.B. Using atomic force microscopy to measure the degree of surface modification of gold nanoparticles // Biointerface Research in Applied Chemistry. 2019, v. 9, № 2, p. 3894-3897, doi: 10.33263.BRIAC92.894897
402. Savushkin Vyacheslav A., Vakhtang V. Dzhavakhiya, Elena V. Glagoleva, Veronika V. Savelyeva, Evgeniya D. Voskresenskaya, Alexander I. Ovchinnikov, Vladislav I. Glagolev, Nikita V. Novak, Yana O. Grebeneva. Enhanced production of virginiamycin with the maintained optimal ratio of its components by a mutant Streptomyces virginiae IB 25-8 strain // Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2019, № 17, p. 408-415, doi: 10.1016/j.bcab.2018.10.021
403. Shanin I.A., Zvereva E.A., Zherdev A.V., Godjevargova T., Eremin S.A. Chemical reagents for immunodetection of fluoroquinolones with determinable specificity // Bulgarian Chemical Communications. 2019, v. 51, Spec. iss. D, p. 27-31
404. Sotnikov D.V., Berlina A.N., Zherdev A.V., Eskendirova S.Z., Mukanov K.K., Ramankulov Y.M., Mukantayev K.N., Dzantiev B.B. Immunochromatographic serodiagnosis of brucellosis in cattle using gold nanoparticles and quantum dots // International Journal of Veterinary Science. 2019, v. 8, № 1, p. 28-34
405. Sotnikov D.V., Berlina A.N., Zherdev A.V., Eskendirova S.Z., Mukanov K.K., Ramankulov Y.M., Mukantayev K.N., Dzantiev B.B. Comparison of three schemes of quantum dots-based immunochromatography for serodiagnosis of brucellosis in cattle // Journal of Engineering and Applied Sciences. 2019, v. 14, № 11, p. 3711-3718, doi: 10.3923/jeasci.2019.3711.3718
406. Titova E.S., Ratner S.V. Environmental Issues and Biofuel Production Prospects in the Central Federal District of Russian Federation // Journal of Environmental Management and Tourism. 2019, v. 10, № 5, p. 1049-1057, doi: 10.14505/jemt.10.5(37).12
407. Tyapkina D.Y., E.Z. Kochieva, M.A. Slugina. Vitamin C in fleshy fruits: biosynthesis, recycling, genes, and enzymes / Накопление витамина с в сочных плодах: биосинтез и рециркуляция, гены и ферменты // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019, т. 23, № 3, p. 270-280, doi: 10.18699/VJ19.492
408. Urusov A.E., Petrakova A.V., Zvereva E.A., Zherdev A.V. Indirect labeling of antibodies as a universal approach to increase sensitivity of lateral flow tests: A case study for mycotoxins detection // Open Biotechnology Journal. 2019, v. 13, Suppl. 1 (М2), p. 113-121, doi: 10.2174/187407070190130113
409. Urusov А.Е., Zherdev А.V., Dzantiev B.B. Towards lateral flow quantitative assays: Detection approaches // Biosensors. 2019, v. 9, № 3, # 89, doi: 10.3390/bios9030089
410. Valiev Khusain, Ashimkhan Kanayev, Aleksandr Bulaev, Aliya Bugubayeva, Aigul Amandikova. Effect of molybdenum and manganese on ferrous iron biooxidation by acidophilic bacterium acidithiobacillus ferrooxidans // International Multidisciplinary Scientific GeoConference SGEM. 2019, v. 19, № 6.3, p. 97-102, doi: 10.5593/sgem2019/6.3
411. Zvereva E.A., Eremin S.A., Zherdev A.V., Dzantiev B.B., Ivanov Y., Atanasova M., Godjevargova T. Rapid immunochemical test systems for food safery control: New solutions with increased sensitivity // Archives of Medicine. 2019, v. 11, p. 33-33
412. А.Б. Гаврилов, С.И. Горяинов, А.А. Мариничев, Н.Н. Гесслер, О.И. Кляйн, Е.П. Исакова, Ю.И. Дерябина. СОСТАВ ПОЛИФЕНОЛОВ В БИОМАТЕРИАЛАХ РОССИЙСКИХ ХВОЙНЫХ ПОРОД // Химия растительного сырья. 2019, № 2, с. 51-58, doi: 10.14258/jcprm.2019024260
413. А.В. Сафонов, Н.Д. Андрющенко, П.В. Иванов, К.А. Болдырев, Т.Л. Бабич, К.Э. Герман, Е.В. Захарова. Биогенные факторы иммобилизации радионуклидов на песчаных породах верхних водоносных горизонтов // Радиохимия. 2019, т. 61, № 1, с. 63-71, doi: 10.1134/S0033831119010106
414. Албулов А.И., Фролова М.А., Варламов В.П., Еремец В.И., Елисеев А.К., Ковалева Э.И. Применение ферментного препарата целловиридин г20х в технологии получения низкомолекулярного хитозана // Пищевая промышленность. 2019, № 4, с. 17-19, doi: 10.24411/0235-2486-2019-10007
415. Александров А.И., Дергалев А.А. Increasing throughput of manual microscopy of cell suspensions using solid medium pads // MethodsX. 2019, v. 6, p. 329-332, doi: 10.1016/j.mex.2019.02.010
416. Атрошенко Д.Л., Пометун А.А., Савин С.С., Тишков В.И. Определение кинетических параметров оксидазы D-аминокислот дрожжей дикого типа и ее мутантов в реакции окисления цефалоспорина С // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2019, т. 60, № 4, с. 226-231
417. Бегунова А.В., Рожкова И.В., Ширшова Т.И., Глазунова О. А., Федорова Т.В. Биосинтез антимикробных бактериоциноподобных соединений штаммом Lactobacillus reuteri LR1: оптимизация условий культивирования // Биотехнология. 2019, т. 35, № 5, с. 58-69, doi: 10.21519/0234-2758-2019-35-5-58-69
418. Белозерская Т.А. Меланиновые пигменты как факторы вирулентности грибов, вызывающих оппортунистические микозы // Успехи медицинской микологии. 2019, т. 20, с. 9-12
419. Берлина А.Н., Жердев А.В., Дзантиев Б.Б. Экспрессные колориметрические методы определения тяжелых металлов: применение поли-т-олигонуклеотида в качестве рецепторной молекулы // Наука: комплексные проблемы. 2019, № 1(13), с. 105-109
420. Бонарцев А.П., Воинова В.В., Акулина Е.А., Дудун А.А., Жаркова И.И., Жуйков В.А., Меньших К.А., Чеснокова Д.В., Махина Т.К., Бонарцева Г.А., Парий И.О., Сурменев Р.А., Сурменева М.А. Пьезоэлектрические свойства поли-3-оксибутирата-СО-3-оксивалерата-полиэтиленгликоля, полученного методом контролируемого микробиологического биосинтеза // Биологический журнал. 2019, № 10. doi: 10.32743/2658-6460.2019.10.10.184
421. Булаев А.Г., бодуэн А.Я., Украинцев И.В. Биоокисление упорного золотосодержащего концентрата руды месторождения бестобе // Обогащение руд. 2019, № 6, с. 8-13, doi: 10.17580/or.2019.06.02
422. В.И. Глаголев, В.В. Джавахия, Е.С. Бабусенко, Е.В. Глаголева, Е.Д. Воскресенская, В.А. Кучугурин. Оптимизация условий культивирования штамма-продуцента иммуносупрессанта такролимус в лабораторных условиях // Химическая технология. 2019, т. 20, № 8, с. 380-384, doi: 10.31044/1684-5811-2019-20-8-380-384
423. Валиев Х.Х., А.У. Бугубаева, А.Б. Амандыкова, А.Г. Булаев. Выщелачивание урана и молибдена из руды месторождения «Восток» // Известия Тульского государственного университета. Науки о Земле. 2019, № 4, с. 92-99
424. Васильева И.С., Хлупова М.Е., Шумакович Г.П., Зайцева Е.А., Морозова О.В., Ярополов А.И. Биокаталитический синтез электропроводящего поли(3,4-этилендиокситиофена) на природной матрице ДНК // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2019, т. 60, № 4, с. 248-253
425. Воинова В.В., Акулина Е.А., Дудун А.А., Жаркова И.И., Меньших К.А., Бонарцев А.П., Чеснокова Д.А., Махина Т.К., Бонарцева Г.А., Чишанков И.Г., Жданко Т.М., Куликовская В.И., Агабеков В.Е. Рост мезенхимальных стволовых клеток на структурированных пленках биосинтетического поли-3-оксибутирата // Биологический журнал. 2019, № 8, с. 4-9, doi: 10.32743/2658-6460.2019.8.8.154
426. Воинова В.В., Акулина Е.А., Дудун А.А., Меньших К.А., Бонарцев А.П., Чеснокова Д.В., Махина Т.К., Бонарцева Г.А., Чишанков И.Г., Жданко Т.М., Куликовская В.И., Шайтан К.В., Агабеков В.Е. Биомиметические структры пленок биосинтетического поли-3-оксибутирата. // Актуальная биотехнология. 2019, т. 3, № 30, с. 585-586
427. Гроза Н.В., Голованов А.Б., Сиротенко Т.И., Белозерская Т.А., Иванов И.В. Методика определения содержания полиненасыщенных жирных кислот в культуральных экстрактах микроорганизмов // Успехи медицинской микологии. 2019, т. 20, с. 506-507
428. Громова О.А., Торшин И.Ю., Зайчик Б.Ц., Ружицкий А.О. Комплексное исследование количества и видов насыщенных и полиненасыщенных жирных кислот в составе препаратов // Медицинский алфавит. 2019, т. 4, № 33/2019, с. 15-24, doi: 10.33667/2078–5631–2019–4–33(408)-15–24
429. Дергачева Д.И., О.И.Кляйн, А.А.Мариничев, Н.Н.Гесслер, Е.С.Богданова, М.С.Смирнова, Е.П.Исакова, Ю.И. Дерябина. Гепатопротекторное действие полифенолов при экспериментальной токсической патологии печени, вызванной тиоацетамидом // Вестник Российского государственного медицинского университета. 2019, т. 6, с. 26-32, doi: 10.24075/vrgmu.2019.075
430. Дудылина А.Л., Иванова М.В., Калатанова А.В., Каленикова Е.И., Макаров В.Г., Макарова М.Н., Шумаев К., Pууге Э.К. Генерация супероксидных радикалов митохондриями сердца и антиоксидантное действие водорастворимых форм убихинола-10 // Биофизика. 2019, т. 64, № 2, с. 282-289, doi: 10.1134/S0006302919020078
431. Дьяченко Е.А., А.В.Кулакова, А.А.Мелешин, Е.З.Кочиева. Аллельная вариабельность гена ингибитора амилаз ai у сортов и линий картофеля // Сельскохозяйственная биология. 2019, т. 54, № 5, с. 970-977, doi: 10.15389/agrobiology.2019.5.970rus
432. Дьяченко Е.А., Середин Т.М., Филюшин М.А. Сравнительная оценка вариабельности ядерного и хлоропластного генома лука-порея (Allium porrum L.) // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019, т. 23, № 7, с. 902-909, doi: 10.18699/VJ19.565
433. Жгун А. А., Авданина Д.А., Макаров В.А, Любавская Е. А. Поиск эффективных фунгицидов для защиты произведений темперной живописи 16-го века из Государственной Третьяковской галереи // Успехи медицинской микологии. 2019, т. 20, с. 476-479, doi: 10.14427/amm.2019.xx.01
434. Жгун А. А., Потапов М. П., Авданина Д.А. Оптимизация этапов пробоподготовки для метагеномного секвенирования образцов, отобранных в государственной третьяковской галерее с произведений темперной живописи XVI-го века // Colloquium-journal. 2019, т., № 17(41), с. 4-13, doi: 10.24411/2520-6990-2019-10570
435. Жгун А.А., Нураева Г.К., Думина М.В., Воинова Т.М., Джавахия В. В., Эльдаров М. А. 1,3-Диаминопропан и спермидин способны повышать уровень продукции ловастатина и экспрессиию lov-генов через регуляцию LaeA У Aspergillus terreus // Успехи медицинской микологии. 2019, т. 20, с. 560-564, doi: 10.14427/amm.2019.xx.07
436. Жгун А.А., Потапов М.П., Авданина Д.А., Волков И.А., Иванов В.В. Пробы для метагеномного секвенирования, отобранные в залах живописи Древней Руси Государственной Третьяковской галереи // American Scientific Journal. 2019, т. 2, № 29, с. 8-20
437. Жетишев Р.Р., Камчатнов П.Р., Каменихина И.А., Ковалева М.А., Петренко Н.В., Ковалев Л.И. Протеомные технологии в диагностике острого инфаркта головного мозга // Журнал неврологии и психиатрии им. C.C. Корсакова. 2019, т. 119, № 5, с. 214-215
438. Жетишева Р.А, Ковалева М.А, Каменихина И.А, Шогенова М.Х, Ковалев Л.И, Наумов В.Г. Гладкомышечный трансгелин и его роль в атеросклеротическом процессе // Атеросклероз и дислипидемии. 2019, т. 4, с. 18-26, doi: 10.34687/2219-8202.JAD.2019.04.0002
439. Зайчик Борис Ц., Ружицкий Александр О., Мотузко Анна Н., Хотченков Вячеслав П. Обзор активированных углей, предалагаемых поставщиками для водоподготовки питьевой воды на территории РФ // Водоочистка. Водоподготовка. Водоснабжение. 2019, № 6, с. 48-52
440. Замятнин А.А., Белозерская Т.А. Размер природных линейных пептидных структур // Актуальные вопросы биологической физики и химии. 2019, т. 4, № 3, с. 315-321
441. Карнышева Э.А., Филиппова С.Н., Брушков А.В. Изучение способности клеток микроорганизмов к миграции в мерзлых породах разной дисперсности // Арктика и Антарктика. 2019, т. 1, с. 53-63, doi: 10.7256/2453-8922.2019.1.29226
442. Кевбрина М.В., А.Г.Дорофеев, А.М.Агарёв, М.Н.Козлов, Ю.А.Николаев, В.Г.Асеева. Анаммокс – перспективная технология удаления азота из сточных вод // Водоснабжение и санитарная техника. 2019, т. 5, с. 28-35
443. Ковалев Д.А., Ковалев А.А., Катраева И.В., Литти Ю.В., Ножевникова А.Н. Эффект обеззараживания субстратов анаэробных биореакторов в аппарате вихревого слоя // Химическая безопасность. 2019, т. 3, № 1, с. 56-64, doi: 10.25514/CHS.2019.1.15004
444. Козлов М.Н., Дорофеев А.Г., Кевбрина М.В., Асеева В.Г., Николаев Ю.А. Перспективы внедрения современных технологий, обеспечивающих достижение нормативов для водоемов рыбохозяйственного назначения // Водоочистка. Водоподготовка. Водоснабжение. 2019, № 1(133), с. 54-57
445. Колпакова В.В., Уланова Р.В., Куликов Д.С., Гулакова В.А., Кадиева А.Т. Зерновые композиты с комплементарным аминокислотным составом для пищевых и кормовых целей // Техника и технология пищевых производств. 2019, т. 49, № 2, с. 301-311, doi: 10.21603/2074-9414-2019-2-301-311
446. Колпакова В.В., Чумикина Л.В., Арабова Л.И. Модификация функциональных свойств белковых концентратов из белого и коричневого риса // Вестник Воронежского государственного университета инженерных технологий. 2019, т. 81, № 1(79), с. 181-189, doi: 10.20914/2310-1202-2019-1-181-189
447. Коротков ЕВ, Короткова М.А. Developing mathematical method for multi alignment of DNA sequences with weak similarity // Journal of Physics: Conference Series. 2019, № 1205, # 012025, doi: 10.1088/1742-6596/1205/1/012025
448. Короткова О.Г., Семенова М.В., Рубцова Е.А., Синицына О.А., Кондратьева Е.Г., Бибиков Н.М., Рожкова А.М., Синицын А.П. Сравнительный анализ свойств рекомбинантной эндо-1,4-β-глюканазы II и её химерной формы с целлюлозосвязывающим модулем // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2019, т. 60, № 5, с. 18-25
449. Кублановская А.А., Хапчаева С.А., Зотов В.С., Зайцев П.А., Лобакова Е.С., Соловченко А.Е. Влияние суспензии клеток микроводоросли Chlorella vulgaris IPPAS C-1 (Chlorophyceae) на биологическую активность и микробиом почвы при возделывании фасоли // Вестник Московского университета. Серия 16: Биология. 2019, т. 74, № 4, с. 284-293
450. Куликов Д.С., Гулакова В.А., Колпакова В.В., Уланова Р.В. Получение белковых концентратов и кормовой микробной биомассы из экстракта тритикале и гороховой муки с использованием ферментов // Пищевая промышленность. 2019, № 4, с. 49-51
451. Литти Ю. В., Ковалев Д. А., Ковалев А. А., Катраева И. В., Михеева Э. Р., Ножевникова А. Н. Использование аппарата вихревого слоя для повышения эффективности метанового сбраживания органических отходов // Водоснабжение и санитарная техника. 2019, № 11, с. 32-40, doi: 10.35776/MNP.2019.11.05
452. Литти Ю.В., Ковалев Д.А., Ковалев А.А., Катраева И.В., Ножевникова А.Н. Использование аппарата вихревого слоя для повышения эффективности метанового сбраживания органических отходов // Актуальная биотехнология. 2019, т. 30, № 3, с. 465-470
453. Литти Ю.В., Ковалев Д.А., Ковалев А.А., Русскова Ю.И., Ножевникова А.Н. Исследование процесса переработки коммунальных органических отходов в анаэробном биореакторе с электрофизическим воздействием на метаногенное микробное сообщество // Актуальная биотехнология. 2019, т. 30, № 3, с. 450-455
454. М.Ю. Антонов, А.В. Попинако, И.Н. Николаев. МОЛЕКУЛЯРНОЕ МОДЕЛИРОВАНИЕ ДИФФУЗИОННЫХ ПРОЦЕССОВ В МЕМБРАННЫХ СТРУКТУРАХ НА ПРИМЕРЕ ИОННОГО КАНАЛА СЕРОТОНИНОВОГО РЕЦЕПТОРА // Вестник Северо-Восточного федерального университета им. М.К. Аммосова. 2019, № 3 (71), с. 5-15, doi: 10.25587/SVFU.2019.71.31940
455. Мартусевич А.К., Голыгина Е.С., Ковалева Л.К., Шумаев К.Б. Оценка влияния различных источников и концентраций монооксида азота на кристаллогенные свойства сыворотки крови in vitro // Биорадикалы и антиоксиданты. 2019, т. 6, № 2, с. 38-46
456. Машкова А.А., Дергачева Д. И., Исакова Е. П., Дерябина Ю. И. Природный стильбен ресвератрол как потенциальный антимикотик // Успехи медицинской микологии. 2019, т. 20, с. 437-440
457. Миронов В.В., Седых А.А., Миронов А.В., Палюткина К.В. Биотермокомпостирование органических отходов // Вестник Всероссийского научно-исследовательского института механизации животноводства. 2019, т. 4, № 36, с. 37-45
458. Моисеенко А.В., Н.Г. Лойко, О.В. Чертков, А.В. Феофанов, Ю.Ф. Крупянский, О.С. Соколова. Анализ элементного состава ДНК-белковых кристаллов in vitro // Вестник Московского университета. Серия 16: Биология. 2019, т. 74, № 4, с. 301-307
459. Мухамеджанова А. С., Шалахметова Г. А., Антипов А. Н., Апикупов З.А. Optimization of conditions for the activation of xanthine oxidase and the formation of nitric oxide in fresh sheep milk // Вестник Национальной академии наук Республики Казахстан. 2019, т. 5, № 381, p. 48-56, doi: 10.32014/2019.2518-1467.123
460. Мысякина И.С., Дорофеева И.К., Сорокин В.В. Споры мицелиальных грибов: элементный состав как показатель скорости выхода из покоящегося состояния // Экобиотех. 2019, т. 2, № 2, с. 197-200, doi: 10.31163/2618-964X-2019-2-2-197-200
461. Мысякина И.С., Сорокин В.В., Дорофеева И. К. Элементный состав как показатель физиологического состояния покоящихся и прорастающих спор аскомицетовых и зигомицетовых грибов // Успехи медицинской микологии. 2019, т. XX, с. 39-42, doi: 10.14427/amm.2019.xx.01
462. Нежданова А.В., Камионская А.М., Щенникова А.В. Совместная оверэкспрессия генов хризантемы CDM86, CDM115 и CDM37 изменяет идентичность всех органов цветка и снижает фертильность табака // Актуальная биотехнология. 2019, т. 30, № 3, с. 69-71
463. Ниязов Н., Синицын А., Рожкова А., Кержнер М., Мосеев П., Зоров И. Н. Оценка эффективности нового ферментного препарата Агроцелл Плюс при доращивании свиней // Комбикорма. 2019, № 4, с. 64-67, doi: 10.25741/2413-287X-2019-04-3-065
464. Нураева Г.К., Жгун А.А. Изучение роли путей биосинтеза полиаминов в повышении продукции цефалоспорина у высокоактивного штамма Acremonium chrysogenum ВКМ F-4081D // Успехи медицинской микологии. 2019, т. 20, с. 556-559, doi: 10.14427/amm.2019.xx.07
465. Пугачева В.М., Суворова Ю.М., Коротков Е.В. База данных потенциальных сдвигов рамки считывания в кодирующих последовательностях из различных геномов эукариот // Биофизика. 2019, т. 64, № 3, с. 446-456
466. Русскова Ю.И., Литти Ю.В., Чернова Н.А., Ножевникова А.Н. Влияние электропроводящих материалов на скорость образования биогаза и на состав метаногенного микробного сообщества в термофильных условиях // Актуальная биотехнология. 2019, т. 30, № 3, с. 541-543
467. Савинова О.С., Зоров И.Н., Васина Д.В., Синицын А.П., Федорова Т.В. Минорные рекомбинантные изоферменты лакказ T. hirsuta 072: получение и свойства // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2019, т. 60, № 4, с. 35-42
468. Самохвалов А.В., Сафенкова И.В., Еремин С.А., Жердев А.В., Дзантиев Б.Б. Применение наночастиц золота для высокочувствительного поляризационного флуоресцентного аптамерного анализа охратоксина А // Российские нанотехнологии. 2019, т. 14, № 7-8, с. 105-113, doi: 10.21517/1992-7223-2019-7-8-91-99
469. Синицын А.П., Короткова О.Г., Рубцова Е.А., Синицына О.А., Кондратьева Е.Г., Середа А.С., Зоров И.Н., Рожкова А.М. Конструирование рекомбинантных продуцентов ферментных препаратов для кормпроизводства с помощью экспрессионной системы на основе гриба Penicillium verruculosum // Биотехнология. 2019, т. 35, № 4, с. 6-14, doi: 10.21519/0234-2758-2019-35-4-6-14
470. Сотников Д.В., Жердев А.В, Дзантиев Б.Б. Математическое моделирование как средство прогнозирования и оптимизации иммунохроматографического анализа // Актуальная биотехнология. 2019, т. 3, № 30, с. 573-574
471. Тышко Н.В., Садыкова Э.О., Груздев Д.С., Сухачева М.В. Мультиплексная полимеразная цепная реакция для количественного определения генно-инженерно-модифицированного картофеля линии EH92-527-1 в пищевой продукции // Вопросы питания. 2019, т. 88, № 1, с. 57-61, doi: 10.24411/0042-8833-2019-10006
472. Хвостов Д.В., Вострикова Н.Л., Жердев А.В., Зверева Е.А., Курзова А.А. Идентификация и количественное определение мышечной ткани на основе контроля прототипических пептидов с использованием метода мониторинга заданных реакций // Аналитика и контроль. 2019, т. 23, № 4, с. 580-586, doi: 10.15826/analitika.2019.23.4.012
473. Хренова М.Г., Томилко А.В., Црельсон В.Г. Электронные стерические факторы в активном центре металло-β-лактамазы и реакционная способность цефалоспориновых антибиотиков // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2019, т. 60, № 3, с. 141-146
474. Христиченко А.Ю., Полозников А.А., Хушпульян Д.М., Смирнова Н.А., Захарянц А.А., Казаков С.В., Тишков В.И., Газарян И.Г. Количественный анализ действия клеточных репортеров на основе фьюжен белков люциферазы. // Вестник Московского университета. Серия 2: Химия. 2019, т. 60, № 4, с. 240-247
475. Чернуха И.М., Вострикова Н.Л., Хвостов Д.В., Зверева Е.А., Таранова Н.А., Жердев А.В. Методы идентификации мышечной ткани в мясных продуктах. Предпосылки создания многоуровневой системы контроля // Теория и практика переработки мяса. 2019, т. 4, № 3.
476. Черняев А.П., В.М. Авдюхина, У.А. Близнюк, П.Ю. Борщеговская, А.С. Илюшин, Е.Г. Кондратьева, И.С. Левин, А.П. Синицын, Ф.Р. Студеникин. Воздействие рентгеновского излучения на кинетику прорастания клубней картофеоя и изменение содержания белка и сахаров в них // Технология живых систем. 2019, т. 16, № 1, с. 59-66, doi: 10.18127/j20700997-201901-07
477. Чулкин А. М., Кислицин В. Ю., Зоров И. Н., Синицын А. П., Рожкова А.М. Определение копийности целевых генов карбогидраз в рекомбинантных в рекомбинантных штаммах гриба Penicillium verruculosum // Биотехнология. 2019, т. 35, № 5, с. 51-57, doi: 10.21519/0234-2758-2019-35-5-51-57
478. Щенникова А.В., Камионская А.М., Нежданова А.В., Гаврилова К.С., Филюшин М.А., Кочиева Е.З., Скрябин К.Г. Факторы транскрипции MhyFIL1 и MhyFIL3 (Monotropa hypopitys) определяют асимметричное развитие боковых органов надземной части растения // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2019, т. 23, № 4, с. 405-411
479. Юркова М.С., Зенин В.А., Садыхов Э.Г., Федоров А.Н. Димеризация антимикробного пептида полифемузина I в единой полипептидной цепи: теоретические и практические следствия // Биотехнология. 2019, т. 35, № 5, с. 36-41, doi: 10.21519/0234-2758-2019-35-5-36-41
CHAPTERS in BOOKS
1. Korzhenkov Aleksei A., Stepan V. Toshchakov, Olga V. Golyshina, Manuel Ferrer, Tatyana N. Chernikova, Karl-Erich Jaeger, Michail M. Yakimov, Peter N. GolyshinAerobic Hydrocarbon-Degrading Gammaproteobacteria: Oleiphilaceae and Relatives.Taxonomy, Genomics and Ecophysiology of Hydrocarbon-Degrading Microbes. Handbook of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. Eds. McGenity T. 2019, p. 1-14. Doi: 10.1007/978-3-319-60053-6_23-1.
2. Tikhonova E.N., Menko E.V., Kravchenko I.K. Bacterial fertilizers for soybean plants: current status and future prospects. New and Future Developments in Microbial Biotechnology and Bioengineering. Microbes in Soil, Crop and Environmental Sustainability. 2019, p. 1-20. Doi: 10.1016/B978-0-12-818258-1.00001-7.
3. Sluchanko N.N., Bustos D.M. Intrinsic disorder associated with 14-3-3 proteins and their partners. Dancing protein clouds: Intrinsically disordered proteins in health and disease, Part A. 2019, p. 19-61. Doi: 10.1016/bs.pmbts.2019.03.007.
4. Tobin J. Verbeke, Svetlana N. Dedysh, Peter F. Dunfield. Methanotrophy in Acidic Soils, Including Northern Peatlands. Microbial Communities Utilizing Hydrocarbons and Lipids: Members, Metagenomics and Ecophysiology. 2019, p. 133-156. Doi: 10.1007/978-3-030-14785-3_6.
5. Kondratieva Tatyana K., Galina R. Demina, Elvira I. Rubakova, Anna V. Goncharenko, Alexander S. Apt, Arseny S. Kaprelyants., Margarita O. Shleeva. Overexpression of Adenylyl Cyclase Rv2212 and cAMP-Dependent Transcription Factor Rv3676 in the Mycobacterium Tuberculosis Confers Better Bacterial Vitality, Recovery from Dormancy and Higher Virulence in MiceTop 5 Contributions in Microbiology: 3rd Edition. 2019, p. 2-21.
6. Tikhonova E.N., Kravchenko I.K. Activity and Diversity of Aerobic Methanotrophs in Thermal Springs of the Russian Far EastNew and future developments in microbial biotechnology and bioengineering. Microbial Biotechnology in Agro- Environmental Sustainability. 2019, p. 1-30. Doi: 10.1016/B978-0-444-64191-5.00001-8.
СOLLECTED ISSUES
1. Ежегодник «Успехи биологической химии», т. 59, 2019, изд-во «Геос», Москва, ISSN 0502-8191.
2. Сборник тезисов отчетной конференции аспирантов: 24–28 июня 2019 г.: направление подготовки 06.06.01 «Биологические науки» / под ред. В.О. Попова, К.Г. Скрябина; сост. Е. С. Титова. – Москва: МАКС Пресс, 2019. – 166 с. ISBN 978-5-317-06213-2
METHODOLOGICAL MATERIALS and REFERENCE BOOKS
1. Slobodkina G.B. Thermodesulfitimonas. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-4. Doi: 10.1002/9781118960608 gbm01661.
2. Dedysh S.N. Bryobacter. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-1. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01667.
3. Sorokin D.Y., Merkel A.Y. Candidatus Methanohalarchaeum. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-3. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01683.
4. Sorokin D.Y., Merkel A.Y., Muyzer G. Desulfurispira. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-4. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01699
5. Sorokin D.Y., Merkel A.Y., Haggblom M.M. Desulfurispirillum. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-5. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01698
6. Galushko A., Zhilina T.N., Kuever J. Genus Desulfonatronovibrio. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-8.
7. Sorokin D.Y., Merkel A.Y. Genus Dethiobacter. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-5. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01696
8. Zhlina T.N., Merkel A.Y. Genus Methanohalobium . Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-6. Doi:
9. Zavarzina D.G., Kublanov I.V.Genus Natranaerobaculum. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-6. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01665
10. Sorokin D.Y., Merkel A.Y. Methanonatronarchaeaceae. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-2. Doi: 10.1002/9781118960608.fbm00318
11. Sorokin D.Y., Merkel A.Y. Methanonatronarchaeales. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-1. Doi: 10.1002/9781118960608.obm00156
12. Sorokin D.Y., Merkel A.Y. Methanonatronarchaeum. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-6. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01682
13. Kovaleva O.L., Elcheninov A.G., Kublanov .IV., Bonch‐Osmolovskaya E.A. Tepidisphaera. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-5. Doi: 10.1002/9781118960608.gbm01509
14. Kovaleva O.L., Elcheninov A.G., Kublanov I.V., Bonch‐Osmolovskaya E.A. Tepidisphaeraceae. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-3. Doi: 10.1002/9781118960608.fbm00305
15. Kovaleva O.L., Elcheninov A.G., Kublanov I.V., Bonch‐Osmolovskaya E.A. Tepidisphaerales. Bergey’s Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. Whitman WB (ed), John Wiley & Sons, Ltd: Chichester. 2019, p. 1-3. Doi: 10.1002/9781118960608.obm00143